Micología Médica Ilustrada, 3ra Edición - Roberto Arenas-FREELIBROS.ORG

28 Sección I Aspectos generales ESPORODOQUIO
Estroma basilar
Sporothrix
Simpodulosporas

Micelio subyacente
Fusarium

ACÉRVULO

Conidios

Radulosporas

Fig. 3-24. Reproducción asexuada por simpodulos-
poras (Sporothrix). (Modiicada de Cours superieur de
mycologie médicale. Paris: Institut Pasteur, 1980.)

Conidiogénesis blástica Micelio

Está dada por gemación, como en las levaduras, Cylindrosporium
y hay dos modalidades básicas: holoblástica y Fig. 3-26. Esquema del esporodoquio y el acérvulo.
enteroblástica. El mecanismo de formación de la (Modiicada de Cours superieur de mycologie médica-
holoblástica es semejante al de inlar un balón, y le. Paris: Institut Pasteur, 1980.)

Fig. 3-25. Fusarium sp., presencia de conidios semilu- en su desarrollo se involucran todas las paredes
nares. celulares. La enteroblástica sucede cuando el
conidio sale a través de una abertura, se rodea de
una nueva pared y deja una cicatriz (ig. 3-23).

La gemación holoblástica puede ser indife-
renciada o ser parte de un conidióforo, y tiene
dos formas: 1) sincronógena: todos los conidios
se forman al mismo tiempo, como en el género
Cephaliophora, y 2) simpodial: en la cual se cons-
tituye un solo conidio y la célula conidiógena
crece lentamente para generar un nuevo conidio;
este mecanismo se puede repetir muchas veces,
por ejemplo Dreschlera (ig. 3-27). Se conocen
hongos pigmentados que producen los conidios
a través de un poro holoblástico (poroconidios)
de forma simpodial, como Bipolaris. Cuando un
conidio holoblástico genera el siguiente, también
por el mismo mecanismo, se forma una cadena

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Hongos 29

Fig. 3-27. Bipolaris y Dreschlera sp., disposición simpo- por ejemplo Microsporum (ig. 6-35, cap. 6). De
dial. manera general es posible decir que en algunos
hongos melanizados de pared gruesa, a menudo
que puede ser acropétala, donde el conidio más estas células se denominan clamidosporas.
joven es el más distal.
En la tálica-ártrica, el ilamento se convierte
En la gemación enteroblástica, las células en una serie de conidios que son liberados en la
conidiógenas son más diferenciadas y a menu- maduración, y se distinguen cuatro tipos: holo-
do dan lugar a conidios en cadenas con sucesión ártrico, enteroártrico, endógeno y sarcínico (ig.
basipétala; el conidio más joven es el más cer- 3-23).
cano a la célula conidiógena. Hay dos formas:
ialídica y anelídica: En el tipo holoártrico, la hifa simplemente
se fragmenta (separación esquizolítica) en una
1. Gemación enteroblástica ialídica. En este serie de conidios, por ejemplo Geotrichum (igs.
caso, en el sitio de salida del conidio queda 3-28, 3-29 y 31-3, cap. 31). En el enteroártrico,
como remanente un collarete a través del la hifa genera de manera alternativa dos clases
cual se producen otros que pueden quedar de células, una desarrolla pared gruesa y se con-
unidos (catenulados) o en un moco (no cate- vierte en conidio y la otra muere y se sacriica
nulados), como en Aspergillus (igs. 23-6 a para liberar los conidios (rexólisis), por ejem-
23-9, cap. 23) y Phialophora (ig. 14-13, plo Coccidioides (igs. 16-3, 16-10, 16-11, cap.
cap. 14), respectivamente. 16). En el tipo endógeno, la hifa forma paredes
internas que rodean el núcleo y cada una se con-
2. Gemación enteroblástica anelídica. Al apa- vierte en un conidio individual, la pared original
recer el primer conidio, éste deja una cicatriz se rompe y los conidios se liberan, por ejemplo
y los subsiguientes se forman a través de ésta y Aureobasidium (ig. 3-16) (ig. 31-26, cap. 31).
dan lugar a una zona en anillos, por ejemplo En el tipo sarcínico, la hifa aumenta de espesor
Scopulariopsis (ig. 31-16, cap. 31). y genera tabiques transversales y longitudinales, y
cada célula es convertida en un conidio, por
ejemplo Botryomyces.

Conidiogénesis tálica

Los conidios se forman de un elemento preexis- Fig. 3-28. Cladosporium sp., esporas producidas por
tente, pues en la parte terminal o intercalar de gemación.
una hifa se forma un conidio después de la cons-
titución de un tabique. Hay dos formas: holotáli-
ca y tálica-ártrica (ig. 3-23).

En la holotálica, el elemento completo se
convierte en un solo conidio que puede ser limi-
tado por un tabique y sacriicar su parte veci-
na (separación rexolítica) o suceder de manera
alternativa fusión de tabiques en la base conidial,

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30 Sección I Aspectos generales

Geotrichum porosporas, aleuriosporas y artrosporas (igs.
3-29 a 3-37).

Artrosporas Blastosporas

Conidios formados por gemación o blastogéne-
sis de la célula conidiógena, que permanece ija;
éstos se observan aislados, en racimos o cade-
nas, como en las levaduras (igs. 3-23 y 3-30)
(ig. 19-7, cap. 19) y Cladosporium (ig. 3-28).

Fig. 3-29. Reproducción asexuada por artrosporas Simpodulosporas
(Geotrichum). (Modiicada de Cours superieur de myco-
logie médicale. Paris: Institut Pasteur, 1980.) Conidios que nacen por gemación, pero la célula
conidiógena sigue creciendo después de la for-
Para facilitar la identiicación de los coni- mación de cada conidio, lo cual da el aspecto
dios de manera práctica, se puede señalar que de ciempiés; las esporas se llaman simpodulos-
es terminal si se origina en el extremo distal de poras y a veces presentan un pequeño dentículo
la hifa; intercalar, si sucede en algún punto a que las une a la célula conidiógena y adquieren
lo largo de la hifa; basípeto, si el conidio más el aspecto de escoina, en cuyo caso se llaman
joven se encuentra en la base de una cadena de radulosporas (igs. 3-23 y 3-24), por ejemplo en
conidios; acrópeto, cuando el más joven se loca- Beauveria y Sporothrix schenckii (ig. 3-31). Es
liza en el extremo distal, y sincrógeno, si varios muy clara la disposición simpodial en Dreschle-
conidios se desarrollan al mismo tiempo a partir ra (ig. 3-27).
de la célula conidiógena.
Fialosporas
Modalidades más frecuentes
de reproducción asexuada Se producen en una célula conidiógena con for-
ma de lorero, por lo que se llama iálide (igs.
Se pueden señalar las siguientes: blastospo- 3-23 y 3-32). Tienen una parte ensanchada en
ras, simpodulosporas, ialosporas, anelosporas, su base, un cuello terminal y un collarete. Las
iálides varían con el hongo, pero en cada uno se
caracterizan por su tamaño, forma y actividad o
disposición constantes (ig. 3-33). Es posible que
se encuentren directamente en la hifa vegetativa,
como en Phialophora (no catenulada) (ig. 14-13,
cap. 14) o que las porte un conidióforo comple-

Candida Cladosporium

Seudohifa

Gemación

Fig. 3-30. Reproducción asexuada por blastosporas. (Modiicada de Cours superieur de mycologie médicale. Paris:
Institut Pasteur, 1980.)

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Penicillium Hongos 31

Phialophora

Fiálides

Fig. 3-31. S. schenckii, simpodulosporas. Fig. 3-32. Reproducción asexuada por ialosporas.
(Modiicada de Cours superieur de mycologie médica-
le. Paris: Institut Pasteur, 1980.)

jo, como en Aspergillus (catenulada) (igs. 23-6 que deja el conidio precedente, de ahí el nombre
a 23-9, cap. 23) y Verticillium (ig. 3-34). de estas esporas (igs. 3-23 y 3-35); se observan,
por ejemplo, en Scopulariopsis (ig. 3-36).
Anelosporas
Porosporas (poroconidios,
El primer conidio aparece en la extremidad de dictiosporas, fragmentosporas)
la célula conidiógena como un simple ensancha-
miento, pero cada nuevo conidio se produce por Conidios de pared gruesa y pigmentada con divi-
gemación a través de la cicatriz en forma de anillo siones de tipo mural (igs. 3-23 y 3-37). También

Fig. 3-33. Fiálides de Penicillium sp. y Aspergillus sp. Fig. 3-34. Verticillium sp., aspecto de la colonia y repro-
ducción por iálides.

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32 Sección I Aspectos generales

Scopulariopsis

Anelosporas

Cicatriz en anillo

Fig. 3-35. Reproducción asexuada por anelosporas
(Scopulariopsis). (Modiicada de Cours superieur de
mycologie médicale. Paris: Institut Pasteur, 1980.)

se llaman dictiosporas y se generan a través de Fig. 3-36. Scopulariopsis sp., reproducción por anelos-
un poro de la célula conidiógena. El hongo pue- poras.
de crecer en dirección distal a partir de la cica-
triz del conidio precedente y adoptar un aspecto dios), por ejemplo Trichotecium, Sepedonium y
simpodial, como en Ulocladium (ig. 3-38), o dermatóitos (igs. 6-1, 6-2, 6-23, cap. 6).
el conidio puede dar lugar a nuevos conidios y
constituir cadenas, por ejemplo en Alternaria
(ig. 3-39).

Aleuriosporas

Se forman por simple ensanchamiento de la extre-
midad de la célula conidiógena, que da lugar a un
solo conidio (igs. 3-23 y 3-40). Pueden ser uni-
celulares (microaleuriosporas o microconidios) o
pluricelulares (macroaleuriosporas o macroconi-

Ulocladium Alternaria
Porospora

Poro

Fig. 3-37. Reproducción asexuada por porosporas o Fig. 3-38. Ulocladium sp., presencia de porosporas
dictiosporas. (Modiicada de Cours superieur de myco- simpodiales (40×).
logie médicale. Paris: Institut Pasteur, 1980.)

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Hongos 33

Fig. 3-41. Geotrichum sp., presencia de artroconidios
holoártricos (25×).

ferrocarril, como en Geotrichum (forma holoár-
trica) (igs. 3-41 y 31-3, cap. 31) y Coccidioides
(forma enteroártrica) (igs. 16-3 y 16-10, cap.
16).

Fig. 3-39. Alternaria sp., presencia de poroconidios o Bibliografía
porosporas en cadenas (40×).
Bonifaz A. Micología médica básica. México. Méndez-Cer-
Artrosporas vantes, 2000:471-5

Éstas son conidios que se producen por la sim- Castillo-Daudí V, Castillo-Daudí M. Técnicas de diagnóstico
ple separación de tabiques en la hifa (igs. 3-23 y en micología cutánea. Piel 1988;3:44-9.
3-29); el aspecto recuerda los vagones de un
Deacon JW. Introducción a la micología moderna. México.
Chrysosporium Trichotecium Noriega-Limusa 1988.

Aleuroconidios Evans GGV, Gentles, JC. Essentials of medical mycology.
London. Churchill-Livingstone 1985.
Fig. 3-40. Reproducción asexuada por aleuriosporas.
(Modiicada de Cours superieur de mycologie médica- Grigoriu D, Delacrétaz J, Borelli D. Medical Mycology.
le. Paris: Institut Pasteur, 1980.) Basel-Switzerland. París: Payot-Laussanne 1987:19-45.

Hoog de GS, Guarro J. Atlas of Clinical Fungi. The Nether-
lands Spain. Centralbureau voor schimmelcultures/Uni-
versitat Rovira I Virgili 1995:1-16, 79-86.

López-Martínez R, Méndez-Tovar U, Hernández-Hernán-
dez F, Castañón-Olivares R. Micología médica. Proce-
dimientos para el diagnóstico de laboratorio. México:
Trillas, 2004:25-30.

Midgley G, Clayton IM, Hay RJ. Diagnosis in color. Medical
Mycology. Chicago: Mosby, 1997.

Odds FC, Rinaldi MG. Nomenclature of fungal disea-
ses. In: Borgers M, Hay R, Rinaldi MG (ed). Current
Topics in Medical Mycology. Barcelona: Prous Science,
1995;6:33-46.

Rippon JW. Medical Mycology. The pathogenic fungi and
the pathogenic Actinomyceres. 3rd ed. Philadelphia:
Saunders, 1988:1-9.

Torres-Rodríguez JM. El laboratorio de micología médica.
En: Torres-Rodríguez JM, Palacio-Hernanz A, Guarro-
Artigas J, Negroni-Briz R, Pereiro-Miguens M (ed).
Micología médica. Barcelona: Masson, 1993:11-22.

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4

Taxonomía y clasificación

La taxonomía de los hongos se ha basado prin- morfos. Algunos hongos presentan varios tipos
independientes de propagación anamorfa y
cipalmente en criterios morfológicos y en las entonces son nombrados sinanamorfos. Un
características de las estructuras de reproducción hongo teleomorfo y uno sinanamorfo pueden
sexuada, sin que haya necesidad de analizar los tener sus propios nombres, por ejemplo la espe-
atributos bioquímicos o isiológicos, salvo en las cie Petriellidium boydii también se conoce con
levaduras, en las cuales tales características son el nombre sinanamorfo de Graphium eumor-
importantes. Hoy en día para análisis taxonómi- phum y Scedosporium apiospermum, aunque
cos, de identiicación y de diagnóstico, se hacen estas tres denominaciones se reieren al mismo
indispensables los estudios moleculares que organismo.
permitan analizar el ácido desoxirribonucleico
(DNA) de los organismos fúngicos de manera La nomenclatura en micología establece
parasitaria o en cultivo. las reglas para usar un lenguaje de aceptación
universal (cuadro 4-1); aquélla denomina a los
El reino de los hongos (Fungae) se compone hongos con dos palabras en latín: el género, con
de una escalera taxonómica que se presenta en el mayúscula la primera letra, y la especie, que se
cuadro 4-1. La familia está compuesta de géne- escribe con minúsculas; ambos deben ir en cur-
ros y éstos contienen las especies. El género es sivas (itálicas) o subrayadas. Cuando hay nece-
un binomio que está formado por el nombre del sidad de mencionar varias especies del mismo
género y el epíteto especíico. Algunos hongos género, es recomendable escribir completo este
tienen un ciclo de vida característico y pueden último la primera vez y en lo sucesivo únicamen-
encontrarse como organismos con morfología te su letra inicial (p. ej., Candida pseudotropica-
diferente (pleomorismo). lis, C. guilliermondii, C. krusei). Para referirse a
una o varias especies sin determinarlas, se utili-
Se dijo que los hongos se llaman teleomor- zan las abreviaturas sp. y spp., respectivamente,
fos si tienen reproducción sexuada y anamorfos después del género (Aspergillus spp.).
si ésta es asexuada. Cuando presentan ambas
modalidades de reproducción se llaman holo- Las primeras clasiicaciones se basaron en
el estudio morfológico de las esporas y sólo
Cuadro 4-1. Taxonomía de los hongos investigaciones más recientes muestran mejor
los mecanismos de formación de estas estruc-
División -cota (Eumycota) turas de reproducción, pues los mecanismos de
Subdivisión -cotina (Ascomycotina) esporulación son los que permiten distinguir las
Clase -mycetes (Plectomycetes) familias. Las técnicas genéticas que incluyen
Orden -ales (Eurotiales) secuencias de DNA y ácido ribonucleico (RNA),
Familia -aceae (Gymnoascaceae) hoy se están utilizando para lograr una clasii-
Género cación natural entre este muy diverso grupo de
Especie (Nannizzia) organismos y tratar de solucionar el problema
de la deinición taxonómica de grupos separados
(Nannizzia por características fenotípicas.

incurvata)

34

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Taxonomía y clasiicación 35

CLASIFICACIÓN GENERAL Cuadro 4-2. Clasiicación general
DE LOS HONGOS de los hongos

El reino Fungae comprende siete divisiones Superreino Reino División
(cuadro 4-2), las cuatro primeras: Myxomycota,
Chytridiomycota, Oomycota y Zygomycota, son Eucariotes Fungae Myxomycota
hongos inferiores y la última división corres- (Eumycota) Chytridiomycota
ponde a los hongos anamorfos antes llamados Oomycota
deuteromicetos o Fungi imperfecti. Ahora se Zygomycota
denominan mitospóricos los hongos sin repro- Ascomycota
ducción sexual conocida y meiospóricos si se les Basidiomycota
conoce. Las divisiones Ascomycota y Basidio- Deuteromycota
mycota corresponden a hongos superiores.
Deuteromycota (Fungi imperfecti). Los núcleos
Los hongos inferiores se caracterizan por del ilamento binucleado se fusionan y dan lugar
presentar ilamentos gruesos cenocíticos o no a un huevo que después de la reducción cromá-
tabicados, multiplicación asexuada por esporas tica produce basidios con cuatro basidiosporas
endógenas y reproducción sexuada por oospo- (Basidiomycota), o ascas, que a su vez tienen
ras o cigosporas (igs. 3-18 y 3-19, cap. 3). Se cuatro a ocho ascosporas (Ascomycota) (igs. 3-
conocen algunos hongos no clasiicados que tie- 20 y 3-21, cap. 3). En estos últimos, la germi-
nen ciclo de vida reducido con endosporulación, nación ocurre en un ilamento haploide (talo o
como Pneumocystis carinii (P. jirovecii) que se micelio) o en una célula gemante (levadura).
coloca todavía en zigomicetos y Rhinosporidium
seeberii que se considera ahora un protozoario Zigomicotina está formada por hongos infe-
acuático (cap. 30). riores perfectos que muestran micelio cenocítico,
con reproducción asexuada por esporangiosporas
Los hongos superiores presentan ilamentos y sexuada por cigosporas. Por lo general, la clase
tabicados y multiplicación asexuada por esporas Zygomycetes comprende hongos sapróitos que
externas (conidios), aisladas o en cadenas o dis- se encuentran en la naturaleza, como mucora-
puestas en conidióforos. La reproducción sexua- les, o en reptiles, como Entomoftorales (cuadro
da ocurre por fusión de dos esporas de sexos 4-3). Los primeros producen mucormicosis y los
diferentes con formación de una fase binucleada segundos, entomoftoromicosis (cap. 22).
o dicariota, por lo que esta división también se
denomina Dikaryomycota, y el estado anamorfo,

Cuadro 4-3. Clasiicación de Zygomycotina (zigomicotina)

Subdivisión Clase Orden Familia Género y especie

Mucoraceae Mucor, M. circinelloides
Absidia, A. corymbifera
Rhizopus, R. oryzae

Rhizomucor pusillus

Mortierellaceae Mortierella wolii

Mucorales Cunninghamellaceae Cunninghamella bertholletiae

Saksenaeaceae Saksenaea vasiformis

Zygomycetes Syncephalastraceae Especie de Syncephalastrum

Choanophoraceae Cokeromyces recurvatus

Zygomycotina

Entomophthoraceae Conidiobolus coronatus
Trichomycetes Entomoftorales Basidiobolaceae
Basidiobolus haptosporus

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Cuadro 4-4. Clasiicación antigua de

Subdivisión Clase Orden Familia

Hemiascomycetes Endomycetales Endomycetacea
Saccharomyceta
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Ascomycotina Myrangiales Saccardinulacea
Pleosporales
Loculoascomycetes Testudinaceae
Pleosporaceae
Evascomycetes Microascaceae

Plectomycetes Eurotiales Eurotiaceae

Gymnoascaceae

*Fase perfecta (sexuada).
**Fase imperfecta (asexuada).

e Ascomycotina (ascomicotina) Anamorfo** 36 Sección I Aspectos generales
Género y especie

Teleomorfo*

ae Endomyces candidus Geotrichum candidum

aceae Kluyveromyces fragilis Candida pseudotropicalis
ae Pichia guillermondii C. guillíermondii
Pichia kudriavzevii C. krusei
Loderomyces elongosporus C parapsilosis

Piedraia hortae

Neotestudina rosatti Monosporium apiospermum
Leptosphaeria senegalensis
Petriellidium boydii

Eurotium nidulans Aspergillus nidulans

Emmonsiella capsulata Histoplasma capsulatum

e Ajellomyces dermatitidis Blastomyces dermatitidis
Especie de Arthroderma Especie de Trichophyton

Especie de Nannizzia Especie de Microsporum

Taxonomía y clasiicación 37

Los tricomicetos se encuentran como pará- Cuadro 4-6. Clasiicación de Basidiomycota
sitos simbiontes en el intestino de artrópodos. (basidiomicotina)

El grupo ascomicotina comprende hongos Subdivisión Clase Orden
perfectos; presentan hifas con tabiques, o son
levaduras; muestran reproducción asexuada por Basidio- Heterobasidio- Filobasidiales
conidios y sexuada por ascas, como las levadu- mycotina mycetes Ustilaginales
ras de la clase Hemiascomycetes, que se pueden Holobasidio-
desarrollar de manera aislada o en un cuerpo mycetes
fructífero o ascocarpo. Si este último tiene forma
de botella, se llama peritecio; si es cerrado, cleis- Basidiomycota, según su ainidad taxonómica,
totecio, y si es en copa o disco, apotecio (ig. ya que ésta puede establecerse por ultraestruc-
3-14, cap. 3). Los evascomicetos se dividen en tura; los primeros tienen una pared de dos capas
loculoascomicetos si sus ascas tienen dos capas, de células, mientras que los segundos son mul-
y en plectomicetos, si poseen sólo una (cuadro tilaminares.
4-4). Una clasiicación más actual y simplii-
cada se presenta en el cuadro 4-5. En la clase Éstos son hongos artiicialmente clasii-
Endomycetes, muchos hongos son unicelulares cados de acuerdo a su modo de crecimiento o
y comprenden el mayor grupo de levaduras, pro- reproducción en: levaduras (blastomicetos),
ducen células gemantes y seudoilamentos. Los hifomicetos o mohos (hyfomycetes) y coelomi-
evascomicetos tienen talo reptado o son unicelu- cetos. Las levaduras son blancas o rojas, generan
lares durante algunas partes del ciclo de vida. enfermedades en seres humanos o viven como
sapróitos en el organismo. Se identiican por
Basidiomicotina está constituida por macro- sus características isiológicas o morfológicas.
hongos perfectos que incluyen setas (cuadro Hay también hongos levaduriformes con célu-
4-6). Tienen hifas con tabiques o son levaduras, las melanizadas que se llaman levaduras negras,
la reproducción es asexuada por conidios, o no aunque casi siempre producen micelio verdade-
presentan estos últimos y muestran reproducción ro y son hifomicetos.
sexuada por basidiosporas. En general, son hon-
gos sapróitos del suelo y plantas. Pueden o no Los hifomicetos (Hyphomycetes) son mohos
tener basidiocarpo para sostener los basidios. con micelio tabicado en cuyas hifas se forman las
esporas asexuadas o conidios; a veces se presen-
Los hongos anamorfos (deuteromicotina, tan en conidióforos simples o coremios.* Corres-
adelomicetos o Fungi imperfecti) comprenden la ponden a la clase Evascomycetes y la mayoría
mayoría de los hongos patógenos; presentan ila- tiene ainidad por la clase Ascomycetes.
mentos tabicados o levaduras, su reproducción
asexuada es por conidios o está ausente (cuadro Los coelomicetos (Coelomycetes) son
4-7). Son hongos imperfectos que no presentan hongos miceliales con tabiques y reproducción
estado sexuado (teleomorfo) o se desconoce. asexuada por conidios* que se forman en un
La mayoría pertenecen a Ascomycota y pocos a cuerpo fructífero constituido por un estroma en
forma de saco o picnidio,* o en agrupaciones
Cuadro 4-5. Clasiicación de Ascomycota micelianas de tipo acérvulo,* mientras que el
resto del micelio permanece estéril.
Clase Orden

Endomycetes Saccharomycetales CONTROVERSIAS TAXONÓMICAS

Evascomycetes Onygenales Por lo general, las enfermedades fúngicas se
Eurotiales denominan con el nombre del hongo causal y el
Microascales suijo -osis o -asis, como aspergilosis, criptoco-
Ophiostomales
Sordariales * Acérvulo, conidio, coremio y picnidio equivale a acérvula,
Dothiderales conidia, coremia y picnidia. Un buen número de micólogos
utiliza indistintamente estos términos.

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38 Sección I Aspectos generales

Cuadro 4-7. Clasiicación de Deuteromycotina (deuteromicotina)

Subdivisión Clase Familia Género y especie
Blastomycetes Criptococcaceae
Candida albicans
Especie de Malassezia
Especie de Cryptococcus
Especie de Trichosporon
Torulopsis glabrata

Deuteromycotina Epidermophyton loccosum
Especie de Microsporum
Aspergillaceae Especie de Trichophyton
Especie de Aspergillus
Especie de Penicillium

Hyphomycetes Especie de Fusarium
Coelomycetes Especie de Beauveria
Especie de Verticillium
Especie de Phialophora
Especie de Cladosporium
Especie de Alternaria
Especie de Aureobasidium

cosis, histoplasmosis, onicomicosis y pitiriasis. de cambiar, si el nombre del organismo causal se
El suijo -sis signiica “estado debido a”, por modiica como resultado de una revisión taxonó-
ejemplo fusariosis se debe a Fusarium. Por este mica. Casi siempre, en hongos dematiáceos, la
motivo, la denominación de una enfermedad pue- taxonomía es inestable y controversial, por ejem-

Cuadro 4-8. Terminología aceptada de enfermedades micóticas

Nombre Infección por

Adiaspiromicosis Chrysosporium/especie de Emmonsia
Aspergilosis Especie de Aspergillus
Blastomicosis
Candidosis/candidiasis B. dermatitidis
Coccidioidomicosis Especie de Candida
Criptococosis
Dermatoitosis/tiñas C. immitis
C. neoformans var. neoformans y var. gattii
Esporotricosis Dermatóitos de los géneros
Favus
Lobomicosis Epiderrnophiyton, Microsporum y Trichophyton
Paracoccidioidomicosis
Pitiriasis (tiña) versicolor S. schenckii
Piedra negra Dermatoitosis crónica con escútulas
Piedra blanca Lacazia (Loboa) loboi
Querión
Tinea imbricata P. brasiliensis
Tinea nigra M. furfur (especie de Malassezia)
Piedraia horataea en pelo
Especie de Trichosporon en pelo
Dermatoitosis inlamatoria profunda

T. concentricum
Forma cutánea macular por dematiáceo

(aceptación limítrofe, pues no es tiña)

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Taxonomía y clasiicación 39

Cuadro 4-9. Terminología controversial brevicaulis). Hay gran número de enfermedades
y no bien aceptada de micosis micóticas que han sido aceptadas y otras que per-
manecen en controversia (cuadros 4-8 y 4-9).
Histoplasmosis Americana o clásica
Histoplasmosis El término seudomicosis se utiliza cuando
Africana la enfermedad es causada por una bacteria o un
capsulatii actinomiceto, pero que por tradición en la mico-
Histoplasmosis Linfangitis epizoótica logía se ha estudiado en el grupo de las micosis,
dada su evolución crónica y la posibilidad de
duboisii P. marneffei producir ilamentos en los tejidos o cultivos que
Histoplasmosis Dermatosis verrucosa se confunden con hongos, como actinomico-
sis y nocardiosis. El término parafúngico se ha
farciminosi con células fumagoides aplicado a organismos miceliares o unicelulares
Peniciliosis marneffei Nombre genérico para que causan infecciones que desde el punto de
Cromoblastomicosis vista clínico o histológico se parecen a los hon-
micosis por dematiáceos gos, como Phytim insidiosum o Prototheca. La
Feohifomicosis Hifomicetos hialinos, nomenclatura clínica de las micosis debe tener
amplia lexibilidad que permita acomodar la
Hialohifomicosis infrecuentes nueva información, así como la modernización
Infecciones por de la vieja terminología. Sin embargo, se debe
Zigomicosis tratar de crear una nomenclatura estable, consis-
zigomicetos tente y dinámica.
Mucormicosis Término que incluye no
(mucoralomicosis) De una manera formal, para estudiar la ter-
sólo el género Mucor, minología de las micosis se ha reunido periódica-
Entomoftoromicosis sino el orden Mucorales mente el Council for International Organizations
Basidiobolomicosis como Rhizopus of Medical Sciences (CIOMS), que es apoyado
Conidiobolomicosis Enthomophthora por la Organización Mundial de la Salud (OMS),
Basidiobolus y también existe un Comité de Nomenclatura en
Conidiobolus la International Society of Human and Animal
Mycology (ISHAM).
plo el hongo Allescheria boydii (así llamado en
la década de 1970) cambió a Petriellidium boydii Bibliografía
y Pseudallescheria boydii en un tiempo relativa-
mente corto, lo que dio lugar a diferentes nom- Bonifaz A. Micología médica básica. México: Méndez-Cer-
bres en la literatura micológica: allescheriosis o
allescheriasis, petriellidiosis o seudallescheriasis. vantes, 2000:471-5.
La misma especie tiene un estado anamorfo que
se conoce como Scedosporium apiospermum y Grigoriu D, Delacrétaz J, Borelli D. Medical Mycology.
entonces se añadió el sinónimo scedosporiosis a
la ya confusa terminología. Basel-Switzerland. París: Payot-Laussanne, 1987:19-45.

También el nombre del hongo y la termi- Hoog de GS, Guarro J. Atlas of Clinical Fungi. The Nether-
nación -isis pueden llevar a términos ambiguos
como sucede con candidosis o candidiasis. Por lands Spain: Centralbureau voor schimmelculturesl Uni-
lo regular, el suijo -osis constituye una descrip-
ción colectiva para descripciones patológicas no versitat Rovira I Virgili 1995:1-16:79-86.
patógenas y es un término aceptado para un gru-
po de infecciones; por eso, hoy en día para evi- López-Martínez R, Méndez-Tovar U, Hernández-Hernán-
tar neologismos se considera una mejor opción
utilizar, por ejemplo: la patología A se debe al dez F, Castañón-Olivares R. Micología médica. Proce-
hongo X (onicomicosis debida a Scopulariopsis
dimientos para el diagnóstico de laboratorio. México:

Trillas, 2004:25-30.

Odds FC, Rinaldi MG. Nomenclature of fungal disea-

ses. In: Borgers M, Hay R, Rinaldi MG (ed). Current

Topics in Medical Mycology. Barcelona: Prous Science,

1995;6:33-46.

Rippon JW. Medical Mycology. The pathogenic fungi and

the pathogenic Actinomycetes. 3rd ed. Philadelphia:

Saunders, 1988:1-9.

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5

Diagnóstico de laboratorio

REQUISITOS mas no lo sustituye. Es útil en algunas micosis
PARA UN LABORATORIO supericiales. Se realiza en un cuarto oscuro y se
DE MICOLOGÍA utiliza una lámpara de luz ultravioleta que emite
radiaciones de unos 366 nm y da luorescencia
1. Sala adecuada para recolectar muestras. reconocible con facilidad (cuadro 5-1), (ig. 5-1)
2. Poseer los instrumentos para realizar análi- (ig. 7-12, cap. 7).

sis directos, cultivos, estudios histopatoló- RECOLECCIÓN DE MUESTRAS
gicos e identiicación de los hongos.
3. Implementar técnicas de búsqueda de anti- Material requerido
cuerpos contra hongos patógenos y oportu-
nistas. La recolección de muestras es sencilla y el mate-
4. De manera idónea, con un laboratorio de rial utilizado es barato y está al alcance de todos;
biología molecular para el estudio del ácido generalmente el instrumental metálico se esteri-
desoxirribonucleico (DNA) de los hongos. liza a la lama. Se usan:
5. De ser posible contar con medidas de biose-
guridad. 1. Pinzas de depilar y tijeras inas y fuertes.
2. Cucharilla de Brocq u hojas de bisturí.
TÉCNICAS Y MÉTODOS 3. Aguja de disección.
4. Cajas de Petri o dos portaobjetos con envol-
La conirmación del diagnóstico de micosis se
basa en una orientación clínica adecuada y en las tura estéril (sirven para obtener y conservar
pruebas de laboratorio más convenientes. Esto las muestras). Para el transporte es mejor
depende sobre todo de las técnicas apropiadas usar paquetes de papel.
de recolección de material anatomopatológico 5. Portaobjetos y cubreobjetos.
para estudio micológico. El método debe tener 6. Asa de aluminio o platino, de preferencia
las características siguientes: recta; se utiliza para sembrar y recolectar
productos.
1. Poner de maniiesto el parásito en las lesio- 7. Matraces Erlenmeyer.
nes. 8. Tubos de ensayo.

2. Permitir el aislamiento del hongo por culti- Cuadro 5-1. Fluorescencia con luz de Wood
vo directo o por medio de animales de labo-
ratorio. Tiña de la cabeza Verde
Microspórica Amarillo-verdosa
3. Identiicación del hongo. Favus No hay
4. Investigación de las reacciones inmunitarias Tricofítica Amarillo-verdosa
Rojo coral
del huésped. Pitiriasis versicolor
Eritrasma
ESTUDIO CON LUZ DE WOOD

Cuando se dispone del equipo necesario, sue-
le practicarse antes que el estudio micológico,

40

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Diagnóstico de laboratorio 41

Rechazo de muestras

1. Ante micosis pulmonares, se recolecta espu-
to mas no la saliva.

2. Las muestras de piel, uñas o pelos deben
tomarse de las zonas enfermas o del límite
entre la lesión y la parte sana, pero no ser
tomadas al azar.

3 Muestras insuicientes.
4. De ser posible no se usen muestras con

mucho tiempo de almacenamiento, puestas
en hielo seco, congeladas o en medios de
trasporte por más de 24 horas.

Fig. 5-1. Fluorescencia rojo coral en eritrasma (luz de Escamas
Wood).
En lesiones cutáneas secas, se recolectan esca-
9. Hisopos estériles, espátulas, torundas. mas abundantes del borde de la lesión o de varios
10. Cepillos. sitios. Se raspa con una cucharilla, una hoja de
11. Jeringas de insulina. bisturí o simplemente con un portaobjetos. Las
12. Frascos. escamas se colocan dentro de una caja de Petri
13. Solución salina, formol y alcohol de 70 gra- o entre dos portaobjetos estériles o lameados, y
se cubren con una hoja de papel donde pueden
dos. anotarse los datos. En lesiones húmedas es mejor
14. Medios de cultivo: agar glucosado de Sa- utilizar cucharilla, pinzas o tijeras. Un análisis
negativo debe repetirse si la lesión es muy suge-
bouraud con antibióticos y sin ellos, medio rente. También es muy eicaz la utilización de
de tioglicolato y, si es posible, medios colo- hisopos previamente humedecidos en agua esté-
rimétricos para levaduras. ril, con los cuales se raspa la lesión y luego se
pasan sobre la supericie del medio de cultivo.
En un laboratorio es muy conveniente contar
con nevera o refrigerador para conservar medios, La cinta adhesiva transparente (“Scotch
cultivos y reactivos; autoclave; estufa de cultivo; tape”) se utiliza en pitiriasis versicolor y derma-
microscopios, de los cuales son muy útiles aque- titis seborreica; se aplica la cinta sobre la piel
llos que cuentan con campo oscuro, contraste de enferma y luego sobre un portaobjetos para obser-
fase y luorescencia, o los de varias cabezas para vación directa al microscopio (ig. 7-7, cap. 7).
la enseñanza.
En lesiones secas, una variante es la biopsia
Obtención de muestras de supericie con cianoacrilato (“Kola-loka”).
Se utiliza una gota sobre un portaobjetos, que se
Para realizarla de manera adecuada es necesario coloca en contacto con la piel durante 40 segun-
pedir al individuo que suspenda cualquier trata- dos. Se retira, se tiñe con ácido peryódico de
miento por lo menos tres días antes; debe recor- Schiff (PAS) y se observa al microscopio (ig.
darse que cualquier sustancia puede inhibir el 5-2).
desarrollo fúngico. En ocasiones conviene limpiar
la zona afectada con alcohol, éter o algún antisép- La técnica del tapiz (Mariat y Adán-Cam-
tico local. Es conveniente contar con una mesa de pos) consiste en frotar la supericie por estudiar
exploración para mayor comodidad del paciente y con un cuadro estéril de alfombra de lana de 5
del personal técnico. La obtención de la muestra, cm por lado que luego se pone en contacto con la
así como su transporte y procesamiento deben lle- supericie del medio de cultivo contenido en una
varse a cabo con estricta técnica estéril. caja de Petri (ig. 6-31, cap. 6). Con ese mismo
fragmento se pueden sembrar varias cajas. Este
método permite atrapar las esporas fúngicas para
luego depositarlas en el cultivo. Es muy útil en

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42 Sección I Aspectos generales

región periungueal y, si hay pus, puede sembrar-
se con el empleo de una pipeta o un hisopo que
puede conservarse húmedo al colocarlo en suero
isiológico.

Exudado de mucosas

Fig. 5-2. Biopsia de supericie, tinción de PAS. Se utilizan asas de alambre de platino rectas o
redondas o de preferencia hisopos. Si el análi-
encuestas epidemiológicas, en lesiones subclíni- sis no es inmediato, estos últimos se colocan en
cas o para enviar muestras por correo. suero isiológico y se refrigeran hasta procesar
la muestra, de preferencia con algún antibiótico
Esta técnica se ha modiicado utilizando de para evitar la reproducción bacteriana. Si se tra-
la misma manera un cuadrado de terciopelo sin- ta de exudado vaginal, la paciente no debe estar
tético que puede usarse sin esterilizar o luego de menstruando, no ha de asearse ni utilizar medi-
exponerlo a luz ultravioleta; se guarda y trans- camentos por vía vaginal al menos en 24 horas;
porta envuelto en papel aluminio. para obtener muestras se coloca a la enferma en
posición ginecológica, se introduce el espejo
Los cepillos similares a los de pelo, dentales vaginal sin lubricante y se recolecta la muestra.
o para masaje circular en el cuerpo pueden utili- En uretra, conjuntiva y conducto auditivo exter-
zarse para obtener muestras de piel cabelluda; es no, se utiliza un hisopo y la muestra recolectada
posible utilizar hisopos de algodón en ésta o en se envía al laboratorio.
cualquier otra localización. Después de pasarlos
o frotarlos por la zona afectada, se colocan sobre Pus y líquidos patológicos
la supericie del medio de cultivo y permitirán (líquido cefalorraquídeo
obtener colonias en todas las puntas del cepillo o [LCR], líquido pleural, orina)
en los sitios de extensión del hisopo. Esta técni-
ca es sencilla, barata y atraumática. Se deben obtener las muestras con técnica estéril
y sembrar una cantidad suiciente (0.5 ml); en
En niños que no colaboran y en encuestas abscesos, si es posible, se punciona y aspira con
epidemiológicas, también se usan placas de con- una jeringa; se levantan las costras y se deposita
tacto que contienen el medio de cultivo y se apli- la muestra en tubos estériles. En LCR y orina,
can directamente sobre la lesión. conviene centrifugar la muestra a 2 000 revolu-
ciones por minuto (rpm) por 20 min; luego, con
Pelos una pipeta Pasteur estéril, se separa con sumo
cuidado el sobrenadante y se pasa a un tubo
Es necesario examinar los pelos afectados; en el estéril; el sedimento se utiliza para las pruebas
caso de tiñas microspóricas, la luorescencia con diagnósticas. En el pus se buscan levaduras, ila-
lámpara de Wood orienta hacia tiña de la cabe- mentos y granos. En LCR, se utiliza tinta china
za. Se utilizan pinzas de depilar con las cuales para detectar Cryptococcus (ig. 21-4, cap. 21).
se arrancan los pelos fácilmente y sin dolor (ig.
6-21, cap. 6). También es posible usar el escalpe- Expectoración
lo y raspar la supericie afectada.
Se utiliza un desinfectante bucal o solución de
Es necesario obtener la muestra en el límite Lugol o violeta de genciana al 1%. La muestra
entre la región sana y la enferma, sobre todo de no debe dejarse mucho tiempo a la temperatu-
la región subungueal o de la uña en sí. Deben ra ambiente. Se examina una gota sin homo-
obtenerse partículas inas mediante raspado con geneizar o se agita con agua estéril y perlas de
hoja de bisturí o cucharilla. Cuando hay perio- vidrio. Ante la sospecha de micosis pulmonar,
nixis, es necesario recolectar escamas de la es preferible obtener una muestra bronquial por

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Diagnóstico de laboratorio 43

broncoscopia; esto permite aspirar secreciones y otra en un tubo estéril para cultivo, de pre-
y realizar estudios histopatológicos. En esputo y ferencia con una solución isiológica o en agua
lavados bronquiales, se aconseja la digestión y la con glicerina al 25% y, si no es actinomiceto, con
concentración de los productos; a 20 ml se aña- un antibiótico antibacteriano. Se machaca la sus-
den 10 ml de pepsina a 1%, se incuba dos horas pensión en un mortero y se siembra. Conviene
a 37°C y se centrifuga a 2 000 rpm durante 30 inocular directamente un animal de laboratorio
min. También se pueden digerir con hidróxido a la vez; éste se sacriica a los 15 días y se siem-
de sodio o N-acetilcisteína y ditiotreitol (mucolí- bran los órganos, lo cual facilita el aislamiento
tico). Se decanta el sobrenadante y el sedimento puro.
se utiliza para las pruebas de diagnóstico.
El estudio anatomopatológico de las mico-
Heces sis supericiales no tiene utilidad práctica, pues
los hongos se ubican en la capa córnea (ig. 7-11,
Se recolectan en un recipiente estéril. Para inves- cap. 7), por lo cual se encuentran más fácilmen-
tigar Candida o Geotrichum, quizá baste un te en un análisis directo, y no generan reacción
pequeño volumen obtenido con un hisopo rec- celular o es mínima, salvo cuando profundizan
tal. En un portaobjetos, se dilacera un volumen (granuloma tricofítico).
reducido sobre una gota de agua estéril o lacto-
fenol, y se coloca el cubreobjetos. En las micosis subcutáneas o sistémicas,
dicho estudio es muy importante o indispensa-
Sangre ble. La reacción inlamatoria y las alteraciones
hísticas son inespecíicas pero orientadoras; el
Para hemocultivo ésta ha de citratarse, heparini- hongo casi siempre está presente y se observa en
zarse y desibrinarse con perlas de vidrio o con su fase parasitaria (igs. 13-15, cap. 13 y 14-17,
el anticoagulante ácido etilendiaminotetraacéti- cap. 14).
co (EDTA) en la misma proporción que para la
biometría hemática. Se inoculan 2 a 5 ml de san- La tinción sistemática se lleva a cabo con
gre en matraces con 100 ml de caldo glucosado hematoxilina y eosina, importante para valorar
de infusión de cerebro-corazón y se incuban a el tipo de reacción en los tejidos, que puede ser:
37°C. En reacciones de precipitación o ijación congestiva con vasodilatación, edema, exudados
de complemento, se utiliza suero obtenido des- y depósitos de ibrina; purulenta, con cúmulos
pués de la retracción del coágulo. A 10 ml de de polimorfonucleares, o más a menudo granu-
suero, se añaden unas gotas de timerosal (“Mer- lomatosa con histiocitos, células gigantes de
thiolate”) al 1% o de azida de sodio al 5%; luego tipo cuerpo extraño o de Langhans, rodeadas por
de separar el suero, éste se debe conservar en linfocitos y plasmocitos. Estos últimos pueden
congelación. alterarse y dar lugar a cuerpos de Russel. Los
granulomas son sensibles de combinarse con
Frotis una zona purulenta o presentar una zona central
necrótica (ig. 18-10).
Puede ser útil en pus, exudados y otros líquidos
como expectoración; se ijan los especímenes en El nódulo (granuloma) micótico (ig. 5-3)
un portaobjetos mediante calentamiento ligero o propio de las micosis profundas se presenta con
poniendo dos gotas de alcohol. Se puede utilizar cuatro zonas características: 1) un centro puru-
tinción de Gram, azul de metileno, Giemsa, PAS lento, donde se encuentra el parásito; 2) una
o Papanicolaou (ig. 23-3, cap. 23). corona de histiocitos con cierta distribución en
palizada; 3) una zona granulomatosa, y 4) ibro-
Biopsia de tejidos u órganos sis importante. Según la micosis, quizá predomi-
ne cualesquiera de estas zonas o tal vez haya una
Del fragmento obtenido, es posible colocar una ainidad particular (vascular en mucormicosis)
parte en formol al 10% o en solución de Bouin (ig. 22-9, cap. 22).

En la técnica de PAS, se utiliza ácido peryó-
dico de Schiff (Hotchkiss Mac Manus), coloran-
te con gran ainidad por mucopolisacáridos y,
como consecuencia, elegible para membranas
fúngicas, que se observan de color rojo en un

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44 Sección I Aspectos generales

Fig. 5-3. Nódulo micótico, célula gigante multinuclea- 5. Presencia de esférulas o esporangios (cocci-
da tipo Langhans y levadura (PAS 40×). dioidomicosis [igs. 16-9 y 16-10, cap. 16],
rinosporidiosis [ig. 30-3]).
fondo verde (ig. 16-11, cap. 16). La impregna-
ción argéntica con nitrato metenamina de plata En ocasiones se observa fenómeno de Splen-
(Gomori-Grocott) colorea intensamente de negro dore-Hoeppli, en el cual las estructuras fúngicas
las paredes del hongo, no así las ibras reticula- están rodeadas de material eosinóilo ibrinoide
res (ig. 18-10, cap. 18). con distribución radiada, que corresponde a una
reacción entre antígeno y anticuerpo (ig. 13-15,
La tinción de Ziehl-Neelsen (ZN) o el méto- cap. 13). Ese material forma las clavas en granos
do ZN modiicado de Kinyoun es útil en actino- actinomicóticos causados por Nocardia y Acti-
micetos; los granos o los cultivos de Nocardia nomyces (igs. 12-20, cap. 12 y 24-5, cap 24); en
muestran resistencia parcial al ácido y Actinomy- esporotricosis, rodea a una levadura y da lugar al
ces no es resistente (igs. 24-5, cap. 24 y 25-2, cuerpo asteroide; en conidiobolomicosis es muy
cap. 25). La tinción de Gram o de Ziehl-Gram característico y rodea a un ilamento (ig. 22-15,
se usa para teñir ilamentos actinomicóticos. Es cap. 22). Sin embargo, puede ser un elemento
posible combinar impregnación argéntica con inespecíico y presentarse en cualquier hongo o
mucicarmín para Cryptococcus. Casi nunca se parásito.
usa Giemsa.
Es importante la identiicación correcta de
El diagnóstico de micosis se puede conir- cuerpos extraños (algodón, cristales, calciica-
mar si se encuentran las estructuras micóticas y, ciones) y, si es posible, utilizar luz polarizada
si éstas son muy especíicas, se llega a identiicar para deinirlos mejor, ya que pueden simular
la especie (Actinomadura madurae) (ig. 12-22, estructuras micóticas; por ejemplo, los tofos
cap. 12). Los hongos se presentan en forma de gotosos se confunden con granos de micetoma;
ilamentos, levaduras y esporangios; se agrupan los ilamentos de ibrina, con ilamentos actino-
de cinco maneras: micéticos; los cuerpos de Russel, con levaduras,
y otros parásitos, como Leishmania, con Histo-
1. Filamentos apelotonados en colonias densas plasma (ig. 17-6, cap. 17). Es importante no
o granos (aspergiloma, micetomas, actino- considerar como patógenos los hongos saprói-
micosis) (igs. 12-20, cap. 12; 23-1, cap. 23 tos que se adhieren a, o se desarrollan en, los
y 24-5, cap. 24). especímenes para estudio anatomopatológico
(porosporas). Se debe recordar que una micosis
2. Exclusivamente ilamentos (aspergilosis, no siempre es primitiva y que puede desarrollar-
nocardiosis, icomicosis) (igs. 22-9, cap. se a partir de procesos neoplásicos, infecciosos
22; 23-1, cap. 23 y 25-3, cap. 25). o metabólicos.

3. Exclusivamente levaduras (blastomicosis Cada frasco debe etiquetarse debidamente
[ig. 19-7, cap. 19], histoplasmosis [ig. 17- con el nombre, la edad y el número de expedien-
6, cap. 17], criptococosis [ig. 21-8, cap. te del enfermo; nombre del médico o laborato-
21]). rio; diagnóstico clínico; evolución; terapéutica,
y tipo de prueba practicada. Si se envían las
4. Levaduras y ilamentos a la vez (candidosis muestras a distancia, es necesario evitar el rom-
[candidiasis]) (ig. 20-22, cap. 20). pimiento del frasco.

Análisis directo

Es sencillo, rápido y barato. Permite observar al
hongo sin modiicaciones y cuantiicar la canti-
dad de elementos. Se efectúa a partir de productos
anatomopatológicos, como escamas, pelos y exu-
dados, así como expectoración u otros líquidos.
Para obtener los primeros, se utiliza un asa de pla-
tino y, para los segundos, una pipeta Pasteur.

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Diagnóstico de laboratorio 45

Los elementos fúngicos se observan al AB
microscopio con la lente de aumento débil
o mediano; en estado fresco, varían de 2 a 20 Fig. 5-4. Artefactos en el examen directo. A, mosaico
micras de diámetro. En general los hongos pató- tricofítico; B, gotas de grasa.
genos son escasos, pero los oportunistas son
muy abundantes. Los cristales de KOH deben añadirse lenta-
mente al agua y agitar hasta la disolución, pues
Los exudados se observan de manera directa la mezcla produce calor.
o se pone una gota de agua destilada o solución
isiológica, pero es más conveniente usar solu- Con solución de lactofenol el aclaramiento
ción de Lugol (solución yodo yodurada) pues es más lento y la observación, más retrasada,
da cierta coloración a los elementos parasitarios pero también permite conservar mejor la integri-
demasiado pálidos (ig. 12-5, cap. 12). dad de los elementos durante mayor tiempo, por
ejemplo pelos.
Yoduro de potasio 2 g
Yodo cristalizado 1 g Cristales de fenol 20 g
Agua destilada 300 ml Ácido láctico 20 ml
Sig.: solución de Lugol Glicerina 40 ml
Agua destilada 20 ml
Para Cryptococcus (ig. 21-4, cap. 21), se Sig.: lactofenol de Amann
utiliza tinta china en solución con agua destilada
(1:1 o 1:2). Los cristales de fenol se disuelven calentan-
do un poco y se puede agregar:
Las muestras con queratina, como pelos y
escamas, son difíciles de observar, por lo que Azul de metileno 0.075 g
deben utilizarse sustancias aclarantes para faci- Sig.: lactofenol azul de algodón (azul de
litar el estudio. Los elementos anatomopatoló- lactofenol)
gicos se colocan con una gota de la solución, se
cubren con un cubreobjetos y se observan a los 5 El sulito de sodio aclara rápidamente, debe
a 10 min (igs. 6-20, 6-21, cap. 6 y 9-4, cap. 9). observarse antes de tres horas y casi no genera
El aclaramiento es más intenso si se calienta un artefactos, pero como la solución es higroscópi-
poco la laminilla, pero esto también destruye el ca, es imposible usarla luego de dos meses.
material biológico con mayor rapidez y la preci-
pitación del mismo produce muchos artefactos Sulito de sodio 10 ml
(ig. 5-4). Agua destilada 75 ml
Alcohol de 80 grados 25 ml
Se utilizan como reactivos solución de pota- Sig.: sulito de sodio al 10%
sa o sosa al 5 a 40%, a la que puede añadirse
glicerina para mejorar el aclaramiento y evitar la El laurilsulfato de sodio aclara lentamente
desecación, o dimetilsulfóxido (DMSO) al 40%, y no tiene actividad antifúngica, por lo que el
que da aclaramiento más rápido, sobre todo en material utilizado para observación directa se
uñas. Con esta solución, el análisis se realiza puede cultivar; debe observarse antes de tres
en pocos minutos y ni siquiera es necesario calen- horas.
tar la laminilla.

KOH 30 g
Agua destilada 70 ml
Sig.: solución de potasa al 30%
NaOH 30 g
Agua destilada 70 ml
Sig.: solución de sosa al 30%
KOH 20 g
DMSO 40 ml
Agua destilada 60 ml
Sig.: solución de DMSO

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46 Sección I Aspectos generales

Laurilsulfato de sodio 5 g
Agua destilada 95 ml
Sig.: laurilsulfato de sodio al 5%

Fijación de escamas

Permite conservar por tiempo indeinido para un Fig. 5-5. Dermatoitoma (negro de clorazol 10 y 40×).
análisis directo; se utiliza sobre todo en la ense-
ñanza. Se coloca una capa delgada de albúmina gota de solución de KOH con una gota de la pre-
de Meyer sobre un portaobjetos. Con la ayuda de paración y se coloca un cubreobjetos, se calienta
una aguja de disección, se colocan encima algu- ligeramente y se examina. Se puede diluir tam-
nos fragmentos de escamas, pelos o raspado de bién 1 a 10 en solución acuosa de azul de Evans
uñas; se dejan secar a la temperatura ambiente al 0.05% como coloración de fondo. Los hongos
toda la noche o una a dos horas a 37°C, y quedan se maniiestan al unirse a polisacáridos, como
listos para teñirse. celulosa y quitina. Se observan hifas, seudohifas
y levaduras, pero es imposible ver endosporas de
El análisis directo en caso de dermatoitosis C. immitis.
muestra ilamentos refringentes que conirman
el diagnóstico (ig. 6-20, cap. 6), y en candidosis
(candidiasis), ilamentos, o levaduras, o ambos
(ig. 20-15, cap. 20). En onicomicosis, en ocasio-
nes se encuentran masas fúngicas que se deno-
minan dermatoitoma (ig. 5-5); su observación
o la de cualquier estructura fúngica en examen
directo se visualiza mejor con negro de clora-
zol. En el resto de las micosis las imágenes son
especíicas, por ejemplo en coccidioidomicosis,
esférulas (ig. 16-9, cap. 16), y en paracoccidioi-
domicosis, levaduras multigemantes (ig. 18-7,
cap. 18).

Entre los artefactos que pueden desorientar
se encuentran: el mosaico fúngico o tricofítico
que simula ilamentos y se produce por los lími-
tes de las paredes de los corneocitos o por depó-
sitos de cristales o lípidos; éstos desaparecen al
añadir agua a la preparación (ig. 5-4). También
originan confusión los pliegues de las escamas.
Las ibras de algodón simulan ilamentos, pero
tienen calibre irregular y extremos deshilacha-
dos. Los depósitos de grasas (pomadas, cremas)
semejan levaduras. A veces se encuentran coni-
dios pigmentados de hongos sapróitos, como
las porosporas (igs. 3-27, 3-37 y 3-38, cap. 3).

Análisis directo Fig. 5-6. Filamentos bajo microscopio de luorescencia.
con luorescencia (ig. 5-6)

Se utiliza blanco de calcolúor bajo el micros-
copio de luorescencia (410 a 450 nm) que sirve
para hacer evidentes los hongos dada la presen-
cia de quitina. En un portaobjetos, se coloca una

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Diagnóstico de laboratorio 47

CULTIVO dosporas, y en T. soudanense para hallar hifas
relexivas (ig. 6-34, cap. 6). Se coloca la placa
Es la siembra de los productos anatomopatológi- de Petri invertida sobre la platina del microsco-
cos en los medios idóneos, y casi siempre se rea- pio, o se puede cortar un fragmento del agar con
liza en laboratorios especializados. Las muestras la colonia incluida y luego calentarse o presio-
se pueden recolectar con un hisopo estéril o con narse ligeramente antes de observar al micros-
el asa de platino previamente calentada al rojo copio. Si se cuenta con dermatoscopio se puede
y enfriada en el medio de cultivo, lo cual facili- utilizar en lugar del microscopio.
ta la adherencia en el caso de pelos y escamas.
En general, se colocan los especímenes sobre la Técnica de resiembra
supericie del medio de cultivo y se conservan a
temperatura ambiente (26 a 27°C); en caso de Se recolecta con el asa de platino un fragmento
micosis profundas, es mejor a 30 a 37°C. Las de la colonia y se deposita en el otro tubo. Sirve
levaduras se siembran con técnica de zig zag para conservar la cepa.
(ig. 28-3, cap. 28).
Cultivo en lámina o microcultivo
Los pelos y las escamas se disponen en frag-
mentos en diferentes puntos de la supericie del El material necesario consta de portaobjetos,
medio; quizá sea útil sembrar cerca de la pared cajas de Petri, caballetes de vidrio en U dentro
de vidrio para observar el cultivo a través de la de estas últimas y agua, todo estéril. Se toma
misma. Algunos colocan los productos anatomo- una caja de Petri con un caballete (si no están
patológicos en alcohol y los enjuagan antes de estériles se pasan por la lama). Se depositan
sembrar. 5 ml de agua en la caja, que evitan la deseca-
ción posterior. Se coloca un portaobjetos sobre
En líquidos, heces y pus, se debe sembrar el caballete y con una pipeta estéril se pone una
aproximadamente 0.5 a 1 ml por tubo. capa de gelosa en la supericie de la laminilla y
se reaspira para minimizar el espesor de la capa.
Las levaduras se desarrollan en 24 a 48 Se siembra en el centro un fragmento del cultivo
horas, y los contaminantes, en dos a cuatro días, y se incuba a la temperatura seleccionada.
pero la mayoría de los hongos patógenos requie-
re una a dos semanas. Luego del desarrollo suiciente del cultivo,
se retira el exceso de gelosa, se pone una gota de
Para observar al microscopio las levaduras, azul de lactofenol, se cubre con una laminilla, se
basta tomar una asada del cultivo y observarla sella y se examina.
con cualquier colorante aunque se preiere azul
de lactofenol. En hongos ilamentosos, se puede Hay dos variedades de esta técnica:
usar una aguja y desmenuzarlos, o bien se uti-
liza cinta adhesiva transparente (“Scotch tape”) 1. Lámina desecada. Tras retirar el exceso de
que se coloca suavemente sobre la supericie del gelosa, se seca el cultivo a 37°C, se ija con
medio de cultivo y luego se deposita sobre un una gota de alcohol absoluto, se colorea con
portaobjetos, donde previamente se ha vertido azul de algodón, se deshidrata con alcohol, se
una gota del lactofenol; algunos utilizan la solu- enjuaga con tolueno y se monta con resina.
ción de Albert:
2. Cuadrado de gelosa. El cultivo se realiza
Azul de toluidina 0.15 g en el punto medio de los cuatro lados de un
Verde malaquita 0.2 g pequeño cuadrado de gelosa de Sabouraud
Ácido acético glacial 1 ml (1.5 cm de lado y 2 mm de espesor) que se
Alcohol de 96 grados 2 ml coloca en el portaobjetos poniendo encima
Agua destilada 110 ml el cubreobjetos (ig. 5-7). Después del creci-
Solución stock 10 ml miento del hongo se retiran el cubreobjetos
Glicerina 3 ml y la gelosa. De esta manera, los ilamentos y
Agua destilada 20 ml los órganos de reproducción quedan unidos
Sig.: solución de Albert al cubreobjetos y el portaobjetos. Ambas
partes se montan con azul de algodón, se
La observación in situ es factible en Candi- sellan y examinan al microscopio.
da y Trichophyton verrucosum para ver clami-

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48 Sección I Aspectos generales

características isiológicas; para sembrar la cepa
problema se hace una suspensión en solución
salina estéril.

Auxonograma

Fig. 5-7. Representación gráica de un microcultivo. Es la utilización o la asimilación de alimen-
tos con carbono o nitrógeno. Los métodos son
Otra técnica de tinción consiste en quitar el variantes de la técnica de Beijerinck. El material
medio de cultivo, luego se seca el portaobjetos en usado comprende cajas de Petri estériles de 15
la estufa a 37°C durante 24 horas, y se colorean cm de diámetro con medio para auxonograma.
de la siguiente manera: se agrega alcohol-éter y Se usa el medio sin carbono para estudiar ali-
se deja secar. Se cubre con eritrosina por espacio mentos que contienen este último y sin nitróge-
de 15 min máximo. Se lava en un recipiente con no para alimentos nitrogenados.
agua. Se seca cerca de la lama, se agrega azul
de triptano durante 5 min, se lava con agua. Se Medio de Lodder modiicado
pasa sucesivamente por: alcohol de 30, 70 y 96 (auxonogramas)
grados; alcohol absoluto; acetona, y xilol. Antes
que este último seque, se pone bálsamo de Cana- 1. Asimilación de azúcares:
dá y se monta. Celosa lavada 20 g
Sulfato de amonio 2 g
Cultivo sobre pelo Fosfato monopotásico 1.5 g
o método del anzuelo Sulfato de magnesio 0.25 g
Biotina 108 U
En una caja de Petri, se pone tierra húmeda y se Tiamina 106 U
depositan pelos o cabellos. Este procedimiento Piridoxina 106 U
permite aislar dermatóitos del suelo y estudiar Ácido nicotínico 106 U
sus formas sexuadas. Pantotenato de calcio 106 U
Inositol 105 U
Ataque del pelo in vitro Oligoelementos
(órganos perforadores) (solución de Berthelot) 10 gotas
Agua bidestilada 1 000 ml
En una caja de Petri, se colocan 25 ml de agua
estéril y se agrega 0.1% de extracto de levadura. Medio de Lodder y Bastide
Se depositan pequeños fragmentos de 1 cm de
pelo rubio o de niño; se siembra el hongo por Fosfato dipotásico 1 g
estudiar. Se examinan periódicamente los pelos Sulfato de magnesio 0.5 g
con azul de lactofenol. Si hay órganos perfo- Sulfato de amonio 5 g
radores, se observan como digitaciones per- Agar 20 g
pendiculares a su eje. Es útil en dermatóitos; Agua destilada 1 000 ml
Trichophyton mentagrophytes los produce, no
así Trichophyton rubrum (ig. 6-22, cap. 6). Se utilizan pequeños discos de papel iltro
de 1 cm de diámetro que se impregnan con dos
AUXONOGRAMA Y ZIMOGRAMA gotas de solución al 20% de la sustancia por
estudiar (glucosa, galactosa, maltosa, sacarosa,
En levaduras, éstos son importantes principal- lactosa, rainosa, trehalosa, celobiosa) y se dese-
mente para deinir la especie con base en las can en la estufa.

2. Asimilación de nitrógeno:

Mismo medio anterior, sin sulfato de amo-
nio con 20 g de glucosa pura. Se utiliza para

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Diagnóstico de laboratorio 49

probar sulfato de amonio y KNO3. Se coloca en sodio al 10%. El medio queda de color púrpura
la caja de Petri el medio de cultivo sin el ali- o violeta.
mento que se desea probar y se siembra en toda
la supericie una suspensión de levaduras. Los Para esta prueba de fermentación se pre-
discos se colocan en círculo en la supericie de paran soluciones al 30% de glucosa, maltosa,
la gelosa. Normalmente, en ausencia de un com- rainosa, galactosa, lactosa, sacarosa y trehalosa;
ponente esencial, ningún cultivo se desarrollará luego se impregnan discos de papel iltro que se
en el medio, pero habrá crecimiento del hongo colocan en tubos de hemólisis y se añade el hon-
alrededor del disco que contiene el alimento car- go por estudiar en solución isiológica. El medio
bonado (p. ej., glucosa) o nitrogenado, utilizable previamente derretido en baño María se distri-
por el hongo. buye a 45°C. Se tapan los tubos y se colocan a
37°C durante 24 a 48 horas. Si hay fermenta-
Una variante es el medio de extracto de ción, el medio se decolora.
levaduras para asimilación de azúcares, usado
para identiicar levaduras: ESTUDIO DE LAS
NECESIDADES VITAMÍNICAS
Extracto de levadura 0.67 mg
(“Yeast nitrogen base”) Al medio base se le agregan todas las vitaminas,
Agar noble 20 g salvo la que se desea estudiar. Los tubos se incu-
Agua destilada 1 000 ml ban con un fragmento del cultivo o con una sus-
pensión de esporas o levaduras. No se observa
Se esteriliza este medio base y se añaden crecimiento en el tubo donde falta una vitamina
discos o comprimidos impregnados con los azú- indispensable.
cares por estudiar.
Medio base:
Zimograma
Glucosa tratada con carbón
Es la fermentación de azúcares. Se cultiva la activado 20 g
levadura en un medio líquido con un glúcido y
un indicador coloreado. Se emplean tubos de Asparagina sintética 1 g
hemólisis Ivan-Hall, con un estrechamiento y (o hidrolizado de caseína
una perla de vidrio que actúa como válvula. Se sin vitaminas) 10 g
utiliza medio de agua peptonada con el indicador
(indicador de Andrade). Con técnica estéril, se Gelosa lavada 20 g
agregan unas gotas de solución al 30% del azú- Oligoelementos 10 gotas
car elegido; si hay viraje del indicador, señala
acidiicación; la aparición de una burbuja debajo (solución de Berthelot)
de la perla de vidrio indica formación de gas. Fosfato monopotásico 1.5 g
Sulfato de magnesio 0.25 g
Medio de Marcelou-Kinti, para Agua destilada 1 000 ml
fermentación rápida de azúcares
Se añaden al medio las vitaminas siguientes:
Agar 9 g
Peptona 10 g Biotina 109 U
Púrpura de bromocresol 0.04 g Tiamina 106 U
Cloranfenicol 0.5 g Ácido nicotínico 106 U
Agua destilada 1 000 ml Inositol 105 U
Piridoxina 106 U
Se remoja el agar en 900 ml de agua 24 Pantotenato de calcio 106 U
horas; luego se añade la peptona. Se calienta a
110°C durante 10 min. Se agrega el indicador Las soluciones de las vitaminas se preparan
de bromocresol y el cloranfenicol y se afora a como sigue:
1 000 ml. El pH se ajusta a 7 con bicarbonato de
En 100 ml de agua destilada se colocan 250
mg de inositol, 10 mg de tiamina, o 150 mg de
histidina. Se esterilizan en autoclave a 120°C 10
min. Se agregan 20 a 100 ml de la solución base
y se coloca en tubos. El hongo se siembra en
un tubo con vitaminas y en otro sin ellas. En el

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50 Sección I Aspectos generales

comercio se conocen como “Agar Trichophyton” Inoculación plantar del ratón
y se numeran del uno al siete, el primero no tiene
vitaminas. Para hacerla con facilidad se sostiene irmemen-
te la cabeza del animal, para lo cual se coloca al
SÍNTESIS DE UREASA ratón sobre una pieza de malla de alambre y se
inmoviliza al asir la cola y las orejas; se sostiene
Se realiza por alcalinización debido a la for- con irmeza la pata derecha, se inserta la aguja
mación de carbonato de amonio y se maniies- en el cojinete plantar y se inyectan 0.05 a 0.08
ta por viraje del indicador de pH. Se utiliza ml de la suspensión (ig. 12-37, cap. 12).
medio urea-indol (que se usa para diferenciar
enterobacterias). A 37°C el rojo fenol, de color Inoculación intraperitoneal
amarillo, vira a rojo-violeta en tres a seis horas
(Cryptococcus). Se sostiene al animal de la misma manera, se
lexiona la cabeza y se elevan las patas para dis-
Para dermatóitos se utiliza como medio minuir las posibilidades de lastimar las vísceras,
base: se inserta la aguja en la línea media del abdomen
y se inyectan 0.5 ml de la suspensión. Luego se
Peptona 1 g 1 000 ml buscan nódulos blanquecinos y se extirpan para
NaCl 5 g el diagnóstico.
KH2PO4 2 g
Glucosa 5 g Inoculación intratesticular
Gelosa 20 g
Agua destilada Se presiona la cavidad abdominal para hacer visi-
bles los testículos y se inyecta la suspensión.
Se funde la gelosa y se agrega rojo fenol
(0.2% en etanol al 50%), 6 ml/L. Se esteriliza en Inoculación intracerebral
autoclave 15 a 20 min a 115°C. Se deja enfriar
a 50°C; bajo técnica estéril, se agregan 100 ml Se utiliza aguja calibre 26 o 27 de bisel corto;
de una solución acuosa de urea al 20%, previa- se anestesia al ratón de cuatro a cinco semanas
mente esterilizada por iltración. En los tubos de edad con éter o cloroformo; se inmoviliza la
solidiicados en posición inclinada se siembra cabeza colocando los dedos índice y pulgar de
un pequeño inóculo de la colonia y se incuba a la mano izquierda sobre las orejas. Se inyecta en la
25 grados centígrados. parte posterior del cráneo un poco a la derecha
de la línea media hasta que se percibe un peque-
INOCULACIÓN EXPERIMENTAL ño estirón; se inyectan lentamente 0.02 ml de la
muestra; la muerte en las primeras 24 horas indi-
Se emplea en investigación, pero puede tener ca traumatismo por la inoculación.
utilidad diagnóstica. Se usan conejos, ratas,
ratones, cobayos y cricetos (hámsteres) dora- Inoculación intravenosa
dos. Los hongos pueden ser inoculados por vía
subcutánea (ig. 12-37, cap. 12), intravenosa, Es más sencilla en conejos. La suspensión se
intraperitoneal, intratesticular e intracraneal. La inyecta en las venas del pabellón auricular.
presencia de lesiones es indispensable para ase-
gurar la patogenicidad del hongo. Si después de Inoculación supericial
un tiempo el animal no muere, se sacriica. En la
necropsia, se intenta obtener el cultivo del hongo Sólo se practica en el caso de dermatóitos. Se
inoculado (retrocultivo) y otra parte de los órga- depila y escariica la región abdominal del coba-
nos se ija para estudio histopatológico. yo y se unta con miel de abeja que contiene el
dermatóito.
Para la inoculación, se prepara una suspen-
sión del hongo problema; se coloca en solución
salina una concentración de alrededor de 100
mg/ml y se aplica mediante jeringa de insulina.

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Diagnóstico de laboratorio 51

REACCIONES INMUNOLÓGICAS de oro es el cultivo, por ejemplo en histoplas-
mosis, aunque éste puede tardar varias semanas
Dependen de algunos hongos patógenos y pue- o ser negativo.
den ayudar al diagnóstico. Se dividen en pruebas
de sensibilidad cutánea y en reacciones seroló- Las reacciones serológicas más conocidas
gicas. son las de anticuerpos precipitantes o reaccio-
nes de precipitación. Éstas utilizan antígenos
Pruebas de sensibilidad cutánea celulares (somáticos) y metabólicos, según pro-
vengan de machacados de cultivos o de iltrado
Con estas pruebas, o intradermorreacciones, se de los mismos. Una de las técnicas utilizadas es
investiga la inmunidad celular. Se llevan a cabo la doble difusión en agar, la cual se practica en
con la aplicación intradérmica de antígenos obte- cajas de Petri que contienen gelosa (agar); en un
nidos de iltrados de cultivos o extractos de poli- lado se deposita el suero del paciente y, en el
sacáridos (fase ilamentosa o levaduriforme) de otro, el antígeno; la reacción antígeno-anticuer-
los hongos, de micosis tanto supericiales como po se maniiesta por líneas opacas de precipita-
profundas. Se inyecta 0.1 ml de la solución en la ción (ig. 17-7, cap. 17).
cara anterior del antebrazo o en la región interes-
capulovertebral; la lectura se efectúa en 24 a 48 En la técnica de Ouchterlony, el suero por
horas. La intensidad de la reacción se mide por probar se coloca en un reservorio central, y los
el tamaño de la induración, no por el eritema. antígenos de modo radiado y a la misma distan-
Una reacción positiva mide 5 mm de diámetro, cia (ig. 5-8). En la técnica de gradiente, el suero
una dudosa menos de 5 mm, y si no hay indura- se ubica en un surco central, y los antígenos, en
ción, es negativa (ig. 13-16). depósitos laterales a diferente distancia (ig. 5-8).

Estas pruebas son auxiliares en el diagnósti- Las técnicas de electrodifusión pueden ser
co, el pronóstico o la valoración del estado inmu- inmunoelectroforesis y electrosinéresis. En la
nitario del huésped. Por ejemplo, una candidina primera, se deposita en un portaobjetos una capa
positiva indica contacto previo con el hongo; la delgada de gelosa puriicada en un amortiguador
tricoitina es útil en dermatoitosis inlamato- de Veronal; el suero problema se coloca en un
rias y profundas; una esporotricina positiva en surco central y, los antígenos, en dos perforacio-
presencia de lesiones clínicas es diagnóstica; la nes laterales; la separación electroforética de los
coccidioidina es una intradermorreacción alta- antígenos se logra al colocar los electrodos en
mente especíica, una respuesta positiva indica los extremos de la lámina y la lectura se efectúa
infección; si hay lesiones importantes y es posi- en uno a cinco días (ig. 5-8).
tiva, indica buen pronóstico pero si es negativa y
se acompaña de títulos altos de anticuerpos ija- En la electrosinéresis, se combina la elec-
dores de complemento, el pronóstico es malo. troforesis y la inmunoprecipitación entre los
Algunas, como la histoplasmina y la paracocci- antígenos y los sueros que contienen los anti-
dioidina, generan reacciones cruzadas entre sí. cuerpos; las globulinas emigran al cátodo y, los
antígenos, al ánodo. La lectura se hace en dos a
Serodiagnóstico cuatro horas. Este método puede llegar a consti-
y detección de antígenos tuir un importante recurso diagnóstico y de valo-
ración de tratamiento.
El primero pone de maniiesto la presencia de
anticuerpos. No ha habido gran perfecciona- Otra reacción serológica es la de anticuer-
miento de técnicas de diagnóstico serológico pos aglutinantes de partículas de látex o colodión
en micosis endémicas. En la detección de anti- sensibilizadas con los antígenos respectivos; se
cuerpos, se han usado mezclas crudas de antí- emplean en Candida y Cryptococcus.
genos que dan reactividad cruzada, y no se han
estandarizado; en la búsqueda de antígenos, se Los anticuerpos ijadores de complemen-
han usado técnicas recombinantes. El estándar to en general causan títulos débiles; en algunas
micosis, como las coccidioidomicosis, aquéllos
son muy útiles para establecer el pronóstico; los
títulos altos indican mal pronóstico y, los bajos,
bueno. Las pruebas de inmunoluorescencia indi-
recta se usan sobre todo en investigación; con-
sisten en poner en contacto el suero del paciente

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52 Sección I Aspectos generales

Inmunodifusión S
Gradiente
1 2 3
4
S
6

5

Ouchterlony Inmunoelectroforesis

–+

S = suero
O = antígenos

Fig. 5-8. Técnicas de precipitación en inmunoelectroforesis. (Modiicada de Segretain G, Mariat F, Drouhet L. Diag-
nostic de laboratoire en mycologie médicale. Paris: Maloine, 1979.)

y el antígeno en presencia de una sustancia luo- en micosis sistémicas y nosocomiales, dado el
rescente. Si hay anticuerpos especíicos, éstos aumento en el número de infecciones y la apari-
presentarán luorescencia bajo un microscopio ción de resistencia.
de luz ultravioleta; tal hecho permite cuantiicar
títulos más elevados de anticuerpos que con ija- Las principales diicultades a las que se
ción de complemento. enfrentan los métodos actuales son: las variacio-
nes en el pH, los diferentes tamaños del inóculo,
Las técnicas inmunoenzimáticas que se usan el tipo de medio, tiempo y temperatura de incu-
ampliamente en otras enfermedades, se utilizan bación y, por supuesto, las grandes diferencias en
en investigación o en laboratorios muy especiali- pruebas para levaduras u hongos ilamentosos.
zados. Pruebas tales como el estudio inmunoab- Debido a la falta de estandarización, los resulta-
sorbente enzimático (ELISA), el Western blot, dos son variables y la correlación de los resultados
el radioinmunoanálisis (RIA), la electroforesis, in vitro no es clara con los resultados in vivo.
la contrainmunoelectroforesis, o las pruebas Para medir esta sensibilidad, se han utilizado los
de inmunoluorescencia se analizan de manera siguientes métodos: tubos germinativos, consu-
sucinta en los capítulos respectivos. mo de metabolitos, citometría de lujo, métodos
basados en agar y dilución de caldos de cultivo.
Hay anticuerpos monoclonales contra los La mayoría son poco prácticos. Las técnicas de
componentes estructurales de los hongos patóge- agar son fáciles de practicar y de bajo costo, pero
nos más importantes (disponibles en el comercio tienen gran variación de resultados.
“PA monoclonal-based latex particle agglutina-
tion” y ELISA para Candida, Aspergillus y Cryp- Los métodos de dilución son los más amplia-
tococcus), su introducción ha desarrollado la mente usados y ya han sido estandarizados por el
detección de anticuerpos circulantes en pacientes
inmunodeicientes y son la base potencial para National Committee for Laboratory Standards
nuevas pruebas de detección. (1995), pero están reservados para Candida y
Cryptococcus; no hay métodos estandarizados
PRUEBAS DE SENSIBILIDAD para hongos ilamentosos. La correlación entre
A FÁRMACOS los laboratorios que usan estos métodos es de
90% para anfotericina B, 75% para ketoconazol,
Es cada vez más necesaria la creación de estu- 85% para 5-luorocitosina y 88% para lucona-
dios de sensibilidad para probar los antifúngicos zol, pero el método no es sensible para detectar
resistencia a anfotericina B.

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Diagnóstico de laboratorio 53

En la mayoría de los estudios publicados, diente deinido del agente antimicrobiano a pro-
se encuentra disparidad entre la concentración bar. Las bandas se ubican en el agar sembrado
mínima inhibitoria (CMI) in vitro y la eicacia in con el hongo a determinar. Si se presenta zona
vivo, pero los métodos estandarizados han mejo- de inhibición, se lee en la escala impresa en la
rado la correlación. Con la creación de pruebas in cinta lo que corresponde a la concentración del
vitro de métodos de dilución de caldos de cultivo fármaco. Hay diicultades para medir derivados
(macrodilución) y estandarización del inóculo por azólicos. Tal prueba quizá sea prometedora en
espectrofotometría, hoy es posible correlacionar la valoración de la CMI cuantitativa, es similar
la CMI del fármaco con el resultado clínico. a las pruebas de disco-difusión y está comercia-
lizada.
La falla en la terapéutica se debe a la resis-
tencia, que ha sido estudiada fundamentalmente Se preparan cuatro a cinco tubos con 9 ml
en Candida y en particular a luconazol. Se ha de agua estéril. Para el primer tubo se calcula
perfeccionado una técnica de dilución en CHRO- 1 g o 1 ml de sustrato, por ejemplo, suelo. Se
Magar-Candida usando platos impregnados de homogeneiza y se pasa 1 ml al segundo tubo y
luconazol para detectar mutantes resistentes e así sucesivamente; de los dos últimos tubos se
identiicar las especies. toma 1 ml y se vierte en cajas de Petri estériles,
en éstas se vacían 20 ml de agar-patata-dextrosa
Prueba colorimétrica fundido y enfriado a 45°C. En otras dos, se pone
rosa de Bengala en las mismas condiciones y se
Se basa en el uso de azul de Alamar para pro- homogeneiza por rotación sobre la mesa.
ducir cambio de color de azul a rojo, cuando se
reduce en presencia de un crecimiento microbia- Para sustratos poco contaminados, se cortan
no. Las sales de tetrazolio pueden cambiar de en una caja de Petri fragmentos pequeños del
color cuando se reducen, y para detectarlo se usa material problema y se distribuyen sobre la super-
el espectrofotómetro. icie de otra caja con agar-patata-dextrosa igual
que la anterior, se deja solidiicar y se incuba a
La técnica de Heatley consiste en tomar una 28°C. Para hongos del medio ambiente, se colo-
suspensión homogénea que contenga 2 millones can cajas de Petri con agar-patata-dextrosa y rosa
de esporas, levaduras o fragmentos de ilamen- de Bengala, se destapan y exponen al ambiente 5
tos por milímetro y distribuirla uniformemente a 10 min, se cubren y se observan a diario.
en una caja de Petri que contenga Sabouraud.
Se colocan en la supericie pequeños discos de AISLAMIENTO DEL HONGO
papel iltro previamente impregnados 30 a 60
min con el medicamento por estudiar y secados El hongo patógeno debe ser aislado de otros mi-
a 37°C. Cuando se desarrolla el hongo, se miden croorganismos. Para las levaduras, se pueden
las zonas de inhibición alrededor de los discos. agregar dos gotas de una mezcla de penicilina-
estreptomicina (5 000 U/ml y 5 mg/ml) o emplear
Las pruebas de contacto reproducen muy de medios que contengan cloranfenicol (500 mg/L).
cerca la actividad antifúngica in vivo. Se colo-
can fragmentos o pequeñas gotas de material En hongos ilamentosos, deben eliminarse las
anatomopatológico en una laminilla que tenga bacterias sapróitas al colocar la muestra antes de
concavidades; se cubre el material con la solu- sembrarla en líquido de Raulin, pues tiene pH áci-
ción antimicótica y se mantiene el contacto 1 a do e inhibe bacterias; también es posible ubicar la
10 min. Se enjuaga dos veces con agua destilada muestra en una solución con antibióticos antibac-
y los fragmentos se siembran en Sabouraud. El terianos (penicilina-estreptomicina-cloranfenicol)
control se lleva a cabo con especímenes no pro- o situar dos tubos de la mezcla de antibióticos en
cesados de esta manera. Se incuban durante el el medio de cultivo, pues éstos se difunden bien;
tiempo necesario para el crecimiento del hongo para muchos es más sencillo utilizar medios con
por estudiar. Una variante es colocar en los tubos antibióticos termoestables (cloranfenicol).
con los medios de cultivo la sustancia antimicó-
tica a diferentes concentraciones. Es más difícil eliminar hongos sapróitos de
los cultivos; para lograrlo, es factible incubar a
La prueba E (E test Biodisk) se ha usado con 30 a 37°C (los hongos sapróitos banales se desa-
bacterias, es una banda impregnada con un gra-

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54 Sección I Aspectos generales

rrollan con mayor lentitud a estas temperaturas); Morfología microscópica
utilizar medios especiales para agentes pató-
genos, con sangre o vitaminas, o simplemente Pueden utilizarse los métodos que siguen:
emplear medios con cicloheximida (Actidione).
1. Análisis a través del tubo. Se utiliza la
Técnicas de aislamiento lupa del microscopio, se observa el borde
para líquidos, sólidos y ambiente de crecimiento. Es un método poco preciso
pero rápido.
Se usa una técnica de dilución y vaciado en placa
para sustratos líquidos, o sólidos muy contami- 2. Análisis de un fragmento del cultivo.
nados. Consiste en tomar un fragmento de la colo-
nia, dilacerarlo y observarlo con azul de lac-
IDENTIFICACIÓN tofenol. Es el método habitual, pero puede
DE LOS HONGOS destruir los aparatos esporíferos y diicultar
la identiicación.
Al obtener el cultivo de un hongo se deben estu-
diar sus características macroscópicas, micros- 3. Método de la cinta adhesiva transparente
cópicas y isiológicas para deinir el género y la (Rush-Munro). Es una variante de la técni-
especie. ca anterior y permite observar las estructu-
ras fúngicas casi sin alteración. Se recorta
Las características varían con el medio de un pequeño cuadrado de cinta y se adhiere a
cultivo, la naturaleza de los azúcares, la pureza la parte terminal del asa de platino, se apli-
de la peptona, el pH, el grado de humedad y la ca después la parte adhesiva sobre la colo-
temperatura. Por eso es preferible utilizar siem- nia y luego se coloca sobre un portaobjetos
pre medio glucosado de Sabouraud para estu- con una gota de colorante, se retira el asa,
diar y comparar características estándar en las se añade otra gota de colorante, se pone un
mismas condiciones de humedad y temperatura, cubreobjetos y se observa al microscopio.
evitando contaminaciones.
4. Cultivo en lámina o microcultivo. Es el
Morfología macroscópica más preciso y permite observar las estruc-
turas fúngicas in situ. Consiste en obtener
Se deben estudiar las siguientes características: un cultivo sobre un portaobjetos y observar
el hongo sin deterioro de su morfología (ig.
1. Forma y tamaño. 5-8).
2. Color en la supericie o en el reverso.
3. Difusión del pigmento. En el estudio de los órganos fúngicos se
4. Coloración: blanca, rosada, gris, anaranja- deben estudiar:

da, verde, rojiza, negra. 1. Talo: ilamentos o levaduras; grosor; bifur-
5. Textura: yesosa, glabra, terrosa, granulosa, caciones; presencia o ausencia de tabiques
(micelio tabicado o cenocítico); color.
vellosa, lanosa, cérea, cremosa.
6. Supericie: elevada o plana, levantamiento 2. Esporas asexuadas y aparato conidiógeno.
3. Esporas sexuadas y estructuras donde se
central.
7. Aspecto: plegado, radiado, cerebriforme, forman.
4. Cualquier formación anexa (ornamentacio-
crateriforme.
8. Consistencia: dura, suave, irme, membra- nes) (ig. 3-6, cap. 3).

nosa. Este estudio puede facilitarse utilizando
9. Rapidez de crecimiento: por ejemplo, las contraste de fase.

levaduras y los agentes oportunistas crecen PRESERVACIÓN Y CONSERVACIÓN
en 24 a 48 horas, y los dermatóitos en 5 a DE CULTIVOS
10 días.
Los laboratorios de enseñanza e investigación
deben preservar una colección (stock) para dis-
poner en el futuro de colonias típicas y atípicas

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Diagnóstico de laboratorio 55

de los hongos patógenos, así como de los agen- Campo oscuro
tes oportunistas. El objetivo de conservarlos es
preservar su viabilidad, sin degeneración, varia- Se invierte el sistema óptico y se observa una
ción ni mutación. imagen brillante contra un fondo oscuro, lo cual
permite precisar las características de las pare-
Se pueden mantener en agar, transiriendo des celulares.
periódicamente a medios frescos inclinados.
Para hongos ilamentosos, es posible utilizar Microscopia electrónica
Sabouraud simple, agar-patata, extracto de mal-
ta, harina de maíz (corn meal), y para levaduras, Se usa en investigación morfológica y isiológi-
Sabouraud y extracto de malta preferentemen- ca. No es muy útil en el diagnóstico.
te; en caso de la fase levaduriforme de hongos
dimorfos, se puede usar infusión de cerebro- BIOLOGÍA MOLECULAR
corazón. EN MICOLOGÍA MÉDICA

El método de agua destilada sirve para Como la mayoría de los hongos patógenos
preservar más de un año, y hasta en 10 años son deuteromicetos y presentan características
se obtienen esporas fértiles, prácticamente sin ambientales cambiantes, el uso de técnicas mole-
cambios morfológicos ni isiológicos. En un culares permite estudiar cualidades estables e
pequeño frasco de cristal con tapón de rosca y inmodiicables por el ambiente, como el DNA del
revestimiento de caucho, se añaden 2 a 4 ml de gen y el ácido ribonucleico (RNA) molecular.
agua destilada, se esterilizan en autoclave y aquí
se transiere una parte de la colonia sin exceso de La mejor característica para discriminar
agar; se enrosca irmemente y se coloca un trozo individuos, cepas, especies, géneros y familias
de parailm alrededor de la tapa; se pueden con- deberá ser en el futuro cercano la secuencia de
servar a temperatura ambiente y en la oscuridad. nucleótidos de moléculas de DNA que llevan
Es cómodo, sencillo y barato. la información genética, e indican la distan-
cia genética. Los estudios moleculares tienen
La colonia se puede congelar en refrige- aplicación práctica pues permiten distinguir un
radores a menos de 70°C en agar o glicerol, se aislamiento de otro. Sin embargo, aunque estas
mantiene por más de un año; si se obtiene un técnicas se han perfeccionado en un tiempo
inóculo, inmediatamente se debe regresar al con- relativamente corto y, en ocasiones, son funda-
gelamiento. Congelado en nitrógeno líquido, se mentales en el diagnóstico, es dudoso que en la
conserva hasta cinco años. Para el sellado con rutina diaria puedan suplir los métodos morfoló-
aceite, se cubre la cepa con aceite mineral esté- gicos tradicionales. Por otra parte, hay que tener
ril (dos horas a 120°C); esta técnica es simple, cautela con su uso, pues la simple ampliicación
barata y se preiere para zigomicetos. Tal vez la del DNA en enfermedades por levaduras, como
técnica más conveniente es la de lioilización, pitiriasis versicolor, no necesariamente es diag-
pues permite conservar hongos hasta por 30 y 40 nóstico de infección; en cambio en onicomicosis
años. Como los tubos permanecen sellados, se con cultivos negativos, el procedimiento podría
elimina la posibilidad de contaminación. indicar si se trata de un dermatóito o de un moho
oportunista, como Fusarium.
OTROS TIPOS DE MICROSCOPIA
Las técnicas genéticas utilizadas en la iden-
Contraste de fase tiicación de especies y géneros de hongos com-
prenden: el polimorismo en la longitud de los
Se inserta un disco de cristal o placa de fase en la fragmentos de restricción (RFLP, por sus siglas
lente del objetivo para retirar los rayos lumino- en inglés, restriction fragment length polymor-
sos que difractan a través de las estructuras fún- phism) del DNA mitocondrial (mtDNA), la reac-
gicas, resaltándolas con brillo de fase. Es muy ción en cadena de la polimerasa (PCR, por sus
útil para visualizar las estructuras de reproduc- siglas en inglés, polymerase chain reaction), el
ción con mejor deinición y para fotomicrogra- análisis del polimorismo en la longitud de los
fías elegantes.

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56 Sección I Aspectos generales

fragmentos de restricción de regiones ampli- inglés, annealing temperature) es muy importan-
icadas por PCR (PCR-RFLP), el análisis del te para controlar la especiicidad de la reacción.
polimorismo en la conformación de las cadenas La Ta depende de la composición de bases y del
sencillas de DNA ampliicado por PCR (PCR- tamaño de los cebadores que se unen cada uno a
SSCP), o el análisis de polimorismo del DNA una cadena diferente, delimitando la secuencia
ampliicado con cebadores arbitrarios (RAPD, de nucleótidos que se pretende ampliicar. La
por sus siglas en inglés, random ampliied poly- selección de dichos cebadores constituye uno de
morphic DNA). También en combinación con los puntos más críticos de la prueba de PCR, y 3)
otros métodos, como la electroforesis en geles extensión de la cadena de DNA a copiar a partir
de agarosa y la transferencia a membranas de de los cebadores, utilizando los nucleótidos pre-
DNA (Southern blot) o la de RNA (Northern sentes en la solución. Dicha extensión la lleva a
blot). Se han creado herramientas de gran utili- cabo la enzima polimerasa de DNA, que inicia
dad tanto para estudios genéticos y ilogenéticos, su actividad tras reconocer la unión de los ceba-
como para estudios epidemiológicos y diagnós- dores a las cadenas de la muestra.
ticos de los hongos patógenos involucrados en
las infecciones micóticas. La polimerasa utilizada inicialmente, pro-
cedente de Escherichia coli, se desnaturalizaba
Hibridación cuando se sometía a temperaturas mayores de
90°C durante la primera etapa de cada ciclo y, por
Las moléculas de DNA o RNA sintético son muy tanto, había que reponerla al inicio de cada fase
utilizadas como “sondas” en ingeniería genética de extensión. Sin embargo, hoy en día se utilizan
para detectar, vía hibridación del ácido nucleico, enzimas termoestables como la polimerasa de
las secuencias especíicas de DNA o RNA. El Taq, procedente del microorganismo termóilo
procedimiento general es marcar el ácido nuclei- Thermus aquaticus. La cantidad de copias de la
co sonda, generalmente con fosfato radiactivo secuencia de DNA delimitado por los cebadores
y dejar que la sonda de cadena sencilla hibride se incrementa exponencialmente, debido a que
con ácido nucleico monocatenario derivado del las nuevas copias también sirven como patrones
DNA donado. Por apareamiento especíico de en los subsiguientes ciclos. La técnica de PCR
bases complementarias, dos polinucleótidos presenta, sin embargo, una limitación: es nece-
de cadena sencilla sólo se hibridarán si son total- sario conocer parte de la secuencia que se quiere
mente complementarios. ampliicar, al menos aquellas zonas en las que se
unirán los cebadores.
Reacción en cadena
de la polimerasa Se ha usado en C. albicans, C. tropicalis y
C. parapsilosis, especies de Aspergillus, Hortaea
El gran éxito obtenido a mediados del decenio werneckii, B. dermatitidis y especies de Malas-
de 1980 por Kary Mullis consistió en lograr in sezia. Hay algunas disponibles en el comercio
vitro gran número de copias de fragmentos espe- (Accuprobe, Gen-probe) y para su implementa-
cíicos de DNA, basándose en un principio muy ción se requieren porciones muy pequeñas de la
sencillo: la utilización de mecanismos similares colonia (1 a 2 mm2) y la utilización de un lumi-
a los usados por la propia célula en la replicación nómetro. Este método es útil en la identiicación
del DNA durante la división celular. La reacción de hongos patógenos, pero está limitado su uso
en cadena de la polimerasa (PCR) consiste en la en patógenos tisulares.
repetición cíclica de tres etapas: 1) desnaturali-
zación del DNA bicatenario presente en la mues- Polimorismo en la longitud
tra para separar las dos cadenas, mediante la de los fragmentos de restricción
aplicación de temperaturas mayores de 90°C; 2)
unión especíica de los cebadores (oligonucleó- Esta técnica, conocida como técnica RFLP, permi-
tidos sintéticos) a las cadenas sencillas mediante te diferenciar distintos microorganismos median-
complementariedad de bases. La temperatura a te el análisis de patrones de bandas, derivados de
la que se realiza esta unión (Ta, por sus siglas en la rotura de su respectivo DNA. Estos patrones,
conocidos como periles de restricción del DNA,
se originan debido a la actividad de las enzimas

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Diagnóstico de laboratorio 57

endonucleasas de restricción. Cuanto menor sea Los periles de DNA obtenidos tras la elec-
el tamaño de la secuencia nucleotídica, mayor troforesis son más sencillos de interpretar, pues-
será el número de fragmentos que se generen. to que hay un menor número de bandas y una
pequeña cantidad de DNA es suiciente para
Las endonucleasas de restricción se deno- llevar a cabo el análisis, ya que se obtiene gran
minan con tres o cuatro letras que proceden del número de copias tras su ampliicación por PCR.
nombre de la bacteria en la que se han aislado (p. Esto reduce signiicativamente la cantidad de
ej., la enzima Eco procede de Escherichia coli) muestra necesaria.
y además se le añade un número romano (Eco
RI, Eco RII, Eco 47III), debido a que se pueden Análisis del polimorismo
encontrar varias enzimas de restricción diferen- en la conformación de las
tes, que reconocen distintas secuencias nucleotí- cadenas sencillas de ácido
dicas en la misma bacteria. desoxirribonucleico de regiones
ampliicadas por reacción
Los fragmentos se pueden separar mediante en cadena de la polimerasa
electroforesis en gel de agarosa, obteniéndose
periles de restricción característicos. Los peri- Esta técnica (PCR-SSCP) se basa en la relación
les dependerán de la enzima de restricción usa- entre la movilidad electroforética de una hebra de
da así como del DNA utilizado (DNA nuclear DNA monocatenario (mcDNA) y su conforma-
[nDNA] o mtDNA), aunque el más utilizado ción, que en deinitiva es relejo de su secuencia
es el mtDNA. La comparación entre los peri- nucleotídica. En esta técnica, el DNA bicatenario
les permitirá diferenciar varias especies entre sí (bcDNA) se desnaturaliza a mcDNA y posterior-
o incluso en poblaciones dentro de una misma mente se separan dos hebras mediante electro-
especie. foresis en gel de poliacrilamida, en condiciones
no desnaturalizantes. Cualquier diferencia en la
Este método se usa para identiicación, clasi- secuencia del DNA dará lugar a un cambio de
icación o tipiicación. Se ha aplicado mucho en movilidad de las moléculas de mcDNA, que se
hongos dematiáceos. Con base en estas secuen- visualizará al inal del proceso.
cias, se supo que el agente patógeno asexual S.
schenckii liga ilogenéticamente con el género Análisis del polimorismo
sexuado Ophiostoma; también se han investi- del ácido desoxirribonucleico
gado ilogenéticamente especies de Candida y ampliicado con cebadores
Blastomyces. Hay también fragmentos mitocon- arbitrarios
driales de DNA que contienen genes de transfe-
rencia en T. mentagrophytes y A. nidulans. Se conoce como técnica de RAPD, denominada
también por otros autores AP-PCR (por sus siglas
Análisis del polimorismo en inglés, arbitrarily primed PCR) o DAF (por
en la longitud de los fragmentos sus siglas en inglés, DNA ampliication inger-
de restricción de regiones printing). Se basa en la ampliicación simultánea
ampliicadas por reacción de múltiples fragmentos de DNA nuclear median-
en cadena de la polimerasa te PCR, utilizando para ello un único cebador,
normalmente de 9 a 15 bases, cuya secuencia se
Esta técnica, conocida como técnica de PCR- elige al azar. Las temperaturas de unión (Ta) usa-
RFLP, consiste en el uso combinado de la téc- das (35 a 39°C) son mucho más bajas en compa-
nica de RFLP, explicada anteriormente, y la ración con la PCR tradicional, lo cual favorece la
técnica de PCR. De esta manera, se ampliican poca especiicidad de la reacción. Los fragmen-
fragmentos de DNA especíicos mediante PCR tos se analizan mediante electroforesis.
y posteriormente se tratan con enzimas de res-
tricción, que los cortan en trozos más pequeños. El número y el tamaño de los fragmentos
Diferencias en la secuencia nucleotídica entre ampliicados a partir de un determinado DNA
las especies estudiadas darán lugar a fragmentos
de diferentes tamaños que se analizarán median-
te electroforesis.

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58 Sección I Aspectos generales

mediante RAPD, se conservan constantes siem- 1. Sondas de DNA se han desarrollado para
pre que se utilice el mismo cebador y se haga Histoplasma capsulatum, Coccidioides
el estudio en las mismas circunstancias. De este immitis, Cryptococcus neoformans, Blas-
modo, los periles obtenidos mediante RAPD tomyces dermatitidis, especies de Sacha-
hacen posible la diferenciación del DNA a nivel romyces, Candida albicans, Candida
de especie, o incluso a nivel de individuo. krusei, Candida lusitaniae, Pneumocystis
jiroveci (P. carinii), especies de Aspergillus,
Southern blotting especies de Penicillium, Candida glabrata y
Saccharomyces cerevisiae.
Este método analiza el DNA total de un organis-
mo y no sólo el DNA ribosomal o mitocondrial. 2. La técnica de PCR se ha perfeccionado en
El DNA se corta con una enzima de restricción Candida, Pneumocystis jiroveci, especies
y se separa en fragmentos por electroforesis en de Aspergillus, Trichoderma, Pseudalles-
gel de agarosa, luego de ser desnaturalizado se cheria, Scedosporium, Cryptococcus neo-
transiere a una membrana de naylon o nitroce- formans variedades neoformans y gattii,
lulosa, y se añade la sonda, una secuencia dona- así como sus cuatro serotipos, especies de
da o un oligonucleótido marcado para hibridizar Mucor, S. schenckii, Aspergillus niger y A.
el fragmento complementario del DNA ijado. lavus.
Se observa en autorradiografía, quimioluminis-
cencia o reacción enzimática. Se utiliza en C. 3. La técnica de RFLP se ha establecido para
albicans y A. fumigatus. el género Fonsecaea y para las especies de
Candida (C. tropicalis, C. parapsilopsis, C.
Análisis electroforético lusitaniae, C. krusei y C. glabrata).
del cariotipo
4. La técnica de RAPD está descrita en los
Es el patrón de bandas visualizado en un gel, don- géneros Candida y Malassezia en sus dife-
de cada banda es la expresión de las moléculas rentes especies y se ha descrito en varios
de DNA cromosómico que han sido separadas hongos, entre ellos Aspergillus fumigatus.
por PFGE (por sus siglas en inglés, pulsed full
gel electrophoresis). Ha demostrado su utilidad Los análisis mitocondriales del DNA se
en estudios epidemiológicos de Candida, C. neo- han aplicado ampliamente a los hongos dema-
formans y Malassezia; también se ha estudiado tiáceos. Exophiala jeanselmei tiene heterogenei-
C. immitis y se ha usado un método más reciente dad genética, y se han encontrado 15 tipos de
como RNA total de transferencia (ttRNA, por sus mtDNA, morfológicamente muy similares pero
siglas en inglés, total transfer RNA) que muestra muy distantemente relacionados. E. dermatitidis
patrones similares al cariotipo electroforético. se considera una especie genéticamente homo-
génea.
Polimorismo en la longitud
de los fragmentos de restricción Exophiala spinifera tiene 10 tipos de mtD-
y cariotipiicación electroforética NA, un aislamiento en Japón fue tipo 5 y los ais-
lamientos en China y América han sido 3, 5 y
Éstos constituyen dos procedimientos que miden 6. Phialophora verrucosa se ha dividido en 10
diferencias genotípicas, partiendo de que dos tipos de mtDNA y P. americana en dos tipos,
organismos idénticos tienen la misma secuencia ambas especies son coespecíicas.
de DNA. El DNA ribosomal y el mitocondrial
se digieren con una única enzima de restricción, Fonsecaea pedrosoi, con base en su RFLP,
como EcoRI, revelándose fragmentos en forma se ha dividido en seis tipos de mtDNA muy cer-
de banda sobre un gel electroforético coloreado. canamente relacionados. Con base en la iloge-
nia, hay dos líneas: una para incluir tipos 1 a 4
Las aplicaciones directas de las técnicas de que aparecen en África, América y Asia, y otra
biología molecular se pueden observar en los para 5 y 6 que sólo se encuentran en Sudamérica.
siguientes ejemplos: Cladosporium carrionii, con base en su RFLP se
divide en cuatro tipos de mtDNA muy relacio-
nados; el tipo 1 aislado en Asia, Sudamérica y
África, y el tipo 2, en Australia y Madagascar. Es
probable que este hongo se originara en África,
antes del paso a los otros continentes y se desa-

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Diagnóstico de laboratorio 59

rrollara en esas áreas, pero sólo ha predominado establecimiento de un código único de nomen-
en zonas áridas y no en regiones desfavorables; clatura biológica denominado BioCode: http://
su origen en Sudamérica es poco probable. www.rom.on.ca/biodiversitylbiocode/intro.html

Hortaea werneckii se divide según su mtD- MEDIDAS DE SEGURIDAD
NA-RFLP en nueve tipos vinculados que no
se correlacionan con sus orígenes geográicos, En un laboratorio de micología, se debe actuar
posiblemente por su dispersión aérea o acuáti- con responsabilidad y observar las más elemen-
ca. Las especies aisladas en Sudamérica tienen tales normas de seguridad para evitar accidentes
divergencia genética mayor que en Norteaméri- de trabajo. En la realización de los cultivos, se
ca y Asia. recomienda campana de lujo laminar. Por caren-
cias de este tipo de equipo se utiliza de ordinario
RIESGO BIOLÓGICO una mesa de trabajo, se desinfecta el área antes y
después de las siembras, y se colocan uno o dos
El riesgo biológico es el peligro potencial de mecheros. Es necesario evitar corrientes de aire
contaminación para el trabajador, el laboratorio y plantas naturales; no se debe fumar, comer ni
o el medio ambiente, al manipular microorganis- beber, y ha de impedirse la presencia de perso-
mos en cultivos, productos sanguíneos, tejidos, nas extrañas en el laboratorio.
secreciones u otro tipo de material biológico.
Hay, como en cualquier laboratorio de pro-
Las vías más frecuentes de exposición son los ductos biológicos, hongos patógenos que deben
accidentes con objetos punzocortantes, las pica- manipularse con cuidado. Entre éstos se encuen-
duras y las mordeduras de animales, la inhalación tran: Coccidioides immitis, Histoplasma capsula-
de aerosoles, la ingestión accidental y el contacto de tum, Blastomyces dermatitidis, Paracoccidioides
membranas mucosas con material infectado. brasiliensis y Penicillium marneffei. Todos estos
hongos deberían manejarse en campanas de segu-
De acuerdo a sus características, los agen- ridad biológica con aire iltrado e incinerador.
tes biológicos se encuentran agrupados en cinco
niveles de riesgo biológico: El material que se desecha se debe esterili-
zar en autoclave antes de su incineración. Si hay
1. Riesgo de infección mínima. No hay enfer- rotura accidental de tubos, ha de esterilizarse
medad causada por ellos: hongos de clase la zona con fenol al 5%, colocando previamen-
superior. te toallas humedecidas sobre el área y vigilar
periódicamente a las personas expuestas a estos
2. Riesgo moderado para el trabajador. accidentes.
Resulta de autoinoculación, ingestión o
exposición de membranas mucosas o inmu- Bibliografía
nosupresión: actinomicetos, Blastomyces
dermatitidis, C. neoformans, P. brasiliensis Abiega CD, Arenas R. El laboratorio de Micología. Requi-
y S. schenckii. sitos indispensables para el diagnóstico de micosis. Rev
Hosp Gral Dr M Gea González, 1998;1(1):36-40.
3. Agentes que presentan riesgo alto para el
trabajador y producen enfermedad grave Attili D, de Hoog GS, Pizzirani KA. RDNA-RFLP and ITS1
o potencialmente letal. C. immitis, H. cap- sequencing of species of the genus Fonsecaea, agents
sulatum, H. capsulatum var. duboisii. of Chromoblastomycosis. Medical Mycology, 1998;36
(4):213-7.
4. Agentes que presentan riesgo alto de
infección tanto para el trabajador como Barbee HL, Taylor JW. 18S ribosomal DNA gene sequence
para la comunidad. Se transmiten por vía characters place the human pathogen Sporothrix schenc-
aérea y generalmente no se dispone de tra- kii in the genus Ophiostorna. Exp Mycol, 1992;16:87-91
tamiento: ningún hongo.
Boekhout T, Kamp M, Guého E. Molecular typing of Malas-
5. Agentes con riesgo mayor para el medio sezia species with PFGE and RAPD. Medical Mycology,
ambiente que para el ser humano. Su 1998;36(6):429-32.
entrada en muchos países está prohibida por
leyes itozoosanitarias. Bonifaz A. Micología médica básica. México. Méndez-Cer-
vantes, 2000:471-5
Dada la amplitud del mundo biológico, hoy
en día se desarrolla un megaproyecto para el Castillo-Daudí V, Castillo-Daudí M. Técnicas de diagnóstico
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60 Sección I Aspectos generales

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Sección II

Micosis supericiales

6

Dermatofitosis

Las micosis supericiales fueron descritas por En 1834, Remak observó en material de
favus la presencia de ilamentos y en 1837 lla-
los griegos y los romanos; los primeros les lla- mó al hongo Achorion schonleinii; publicó sus
maron herpes por su forma circular, y los segun- observaciones entre 1840 y 1845 (ig. 1-2, cap.
dos, tinea, que signiica larva o polilla, segura- 1). En 1839, Johann L. Schönlein estudió este
mente por su aspecto en la localización cefálica. hongo y concluyó que el favus se originaba de
En la Europa del siglo xiii, curar o sólo asistir a plantas (cap. 1). En 1840, Cazenave observó una
los tiñosos bastaba para abrir las puertas del cie- epidemia de tiña tondante (microspórica) que
lo. Ejemplo de tal creencia es la obra de Esteban adquirieron 14 hijos de diplomáticos en colonias
Murillo “Santa Isabel de Hungría curando tiño- francesas. En 1841, Gruby (ig. 1-3, cap. 1) cul-
sos”, representa\ción de quien dedicó gran parte tivó y describió el hongo del favus y reprodujo
de su vida a estos enfermos. la enfermedad en piel sana; en 1843 describió la
parasitación endothrix y cultivó Microsporum
Entre 1807 y 1828, se presentaron en París audouinii. En 1845, Malmsten creó el género Tri-
25 000 casos de tiña de la cabeza. En ese tiempo chophyton e identiicó Trichophyton tonsurans.
se usaba como tratamiento la calota, un birrete En 1845, Lebert denominó Oidium schoenleinii
preparado con resinas, se dejaba secar y luego al hongo del favus. En 1847, Robin identiicó T.
se arrancaba bruscamente; de esta manera, se mentagrophytes.
desprendían las escútulas del favus, pero se pro-
ducían grandes hemorragias. En el siglo xvii, un En 1853, Baun y Meissner describieron
jesuita utilizaba dicho procedimiento en Méxi- la localización ungueal y, en 1860, uno de los
co, en indígenas tarahumaras, no sin antes enco- hermanos Mahon enfermó de onicomicosis al
mendarlos a Justo Mártir, el santo de las tiñas. depilar a un paciente con favus. En 1870, Hebra
Entre 1820 y 1830, los hermanos Mahon se enri- describió el eccema marginatum que Sabouraud
quecieron en París al preparar y vender medici- llamó “epidermoitosis inguinal”. En ese mismo
nas secretas para el favus. En 1829, el más joven año, Tilbury Fox se reirió a la tinea circinata de
de ellos describió la “tiña tondante” y publicó la mano.
un libro con información comercial y nociones
cientíicas: Recherches sur la siége et la nature En 1879, Manson nombró tinea imbricata
des teignes. a una enfermedad descrita en la Polinesia como

61

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62 Sección II Micosis supericiales

“tokelau” y que, en 1667, Dampier, en Filipinas, En 1934, Emmons (ig. 1-13, cap. 1),
había descrito como una forma de lepra; Blan- siguiendo las reglas de nomenclatura y taxono-
chard denominó al agente causal Trichophyton mía botánicas, clasiicó los dermatóitos en sólo
concentricum. tres géneros: Trichophyton, Microsporum y Epi-
dermophyton.
En 1882, en un suplemento del Oxford
english dictionary, ya apareció el término “der- Pese a la poca importancia clínica de las
matóito”, aunque se ignora cuándo se acuñó micosis supericiales, es interesante señalar que
y quién lo hizo. En 1883, Majocchi describió los dermatóitos estuvieron a punto de cambiar
un caso originado por Trichophyton violaceum la historia, pues en 1942, durante la Segunda
como “tricoitosis nodular singular”, lo que aho- Guerra Mundial, muchos soldados británicos
ra se conoce como granuloma tricofítico. En aliados presentaron modalidades incapacitantes
1887, Pellizzari observó el típico micelio tricofí- de tiña de los pies, lo cual dio lugar a la obra
tico en las palmas de las manos y emitió la hipó- Fungi go to war.
tesis acerca de la existencia de tinea pedis. En
1892, Djelaleddin-Mouktar identiicó las hifas En 1945, Latapí describió en México los
en la tiña de los pies. En 1902, Robin describió primeros casos de tokelau en la sierra norte de
Microsporum canis. En 1908, Whitidd comuni- Puebla (ig. 1-11, cap. 1).
có el primer caso británico de tiña de los pies.
En 1954, Conant (ig. 1-12) propuso una
En 1890, Sabouraud (ig. 1-5, cap. 1) ini- clasiicación en grupos para los dermatóitos,
ció el estudio sistemático de la dermatoitosis y, basado en similitudes morfológicas de las colo-
en 1910, publicó una enciclopedia, cuyo tercer nias. En 1958, Gentles curó la dermatoitosis
volumen, “Les teignes”, se considera una obra experimental con griseofulvina y Williams la
clásica de la literatura médica. Clasiicó los usó por vez primera en seres humanos al tratar
dermatóitos en cuatro géneros: Trichophyton, un niño con tiña de la cabeza por M. audouinii;
Microsporum, Epidermophyton y Achorion; después, Blank y colaboradores precisaron las
descubrió el tercero, y el cuarto se anexó des- dosis. En 1959, Dawson y Gentles describieron
pués al Trichophyton. Sus observaciones fueron el Trichophyton (Keratinomyces) ajelloi como el
metódicas y más clínicas que botánicas. Publi- primer hongo teleomorfo de un microorganis-
có muchos trabajos sobre taxonomía y utilizó mo queratinóilo. En 1960, Grifin recuperó la
como tratamiento la depilación manual para evi- observación original de Nannizzi. En 1961 y
tar el crecimiento centrífugo de las tiñas. Plan- 1963, Stockdale describió Nannizzia incurbata
teó la utilidad del acetato de talio para depilar; y N. gypsea, respectivamente.
logró esto por la observación de caída del pelo
en una paciente que tomó el medicamento para En 1977, Ajello hizo una revisión histórica
otros ines. También utilizó radioterapia (ig. 1-5, y señaló que el conocimiento sobre dermatói-
cap. 1). tos ha sido paralelo al desarrollo de la micología
médica en general.
En 1925, Margarot y Devéze señalaron la
luorescencia de los pelos parasitados. En 1927, En 1986, Weitzman, McGinnis (ig. 1-17,
Weidman registró la primera infección podal cap. 1), Padhye y Ajello consideraron que la
por Trichophyton rubrum; en ese mismo año, diferenciación de dos géneros sólo por deter-
Nannizzi descubrió el estado teleomorfo de M. minadas características de las hifas peridiales
gypseum como Gymnoascus gypseum; otros cre- no era suiciente para separarlos y han dejado a
yeron que se trataba de un contaminante y esta Nannizzia como sinónimo de Arthroderma.
contribución quedó ignorada posteriormente.
En 1930, Langeron y Milochevitch propusieron Sinonimia
la transferencia del género Achorion al Tricho-
phyton. Tiñas, epidermoitosis.

Luego renació la confusión terminológica Deinición
debido a la descripción de muchas especies con
base en datos morfológicos y clínicos de poca Micosis supericiales ocasionadas por dermató-
importancia. itos, hongos parásitos de la queratina que com-
prenden tres géneros anamorfos: Trichophyton,

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Dermatoitosis 63

Microsporum y Epidermophyton. Afectan piel Reino Unido y Francia, pero en el resto de Euro-
y anexos. Según la localización se maniiestan pa, países árabes, Irán, Brasil, México y Repú-
por afección pilar, engrosamiento ungueal, o por blica Dominicana, el dermatóito predominante
placas con eritema y descamación con bordes en tiña de la cabeza es M. canis (89%).
activos. Tales micosis son de evolución subagu-
da o crónica más o menos pruriginosa. La inva- El aumento de la frecuencia de T. tonsurans
sión profunda es excepcional. en Estados Unidos y Canadá se ha relacionado
con las migraciones de latinoamericanos, y se
Datos epidemiológicos observa en particular en éstos y en afroameri-
canos, en ocasiones en epidemias instituciona-
Los dermatóitos tienen distribución mundial, les y escolares; también aumenta su frecuencia
pero algunos se limitan a zonas geográicas espe- en Inglaterra y Francia, especialmente en niños
cíicas (cuadro 6-1); la distribución geográica es de raza negra. Trichophyton tonsurans llegó a
dinámica, dados los movimientos migratorios, América con los conquistadores españoles; en
modos de vida, hábitos de salud, o viajes turís- México, hoy en día se presenta en 15 a 28% y
ticos. Constituyen 70 a 80% de todas las mico- continúa decreciendo su frecuencia. Microspo-
sis y tienen una frecuencia de 5% en la consulta rum canis variedad distortum se limita a Austra-
dermatológica. En México, las dermatoitosis se lia, Nueva Zelanda y Estados Unidos.
observan entre los 10 primeros lugares de con-
sulta dermatológica; se han observado en 36.6%, Trichophyton rubrum se encontraba inicial-
y en 80.9% son causadas por T. rubrum, siendo mente en Asia, pero durante la Segunda Guerra
las más frecuentes onicomicosis (30%) y tiña de Mundial se exportó a Europa y posteriormen-
los pies (25 a 30%). te a América; hoy es el más difundido en todo
el mundo. En México se observa en 36 a 52%
Son micosis cosmopolitas que predominan de las dermatoitosis. Trichophyton mentagro-
en zonas tropicales. Se consideran como las más phytes se presenta en 5 a 8% y Epidermophyton
frecuentes de las enfermedades por hongos. Apa- loccosum también tiene una frecuencia similar,
recen en sujetos de cualquier edad, raza o sexo, se observa en 3 a 8%. Trichophyton violaceum se
así como de cualquier medio socioeconómico u localiza en el este del Mediterráneo, Asia, este
ocupación. Las epidemias que afectan la cabe- de Europa y Latinoamérica; recientemente en
za se relacionan con T. tonsurans e infecciones Holanda e Italia. Trichophyton schoenleinii es
subclínicas o fómites, y las relacionadas con M. infrecuente, se encuentra en el Oriente, África y
canis se asocian a perros o gatos; otras epide- este de Europa; hay focos esporádicos en Esta-
mias fuera de la cabeza se vinculan con hongos dos Unidos, Canadá, Guatemala, Brasil, Chile y
antropofílicos, como los casos por T. rubrum en Argentina.
gladiadores. La lora sapróita dermatofítica
en adultos depende también de localizaciones Trichophyton verrucosum tiene distribución
geográicas, se debe a T. tonsurans y M. canis, mundial, se encuentra en Europa y Norteamé-
fundamentalmente, pero T. rubrum se ve en 10% rica; en México se ha aislado una sola vez en
(en niños en 1%) y en algunos países es T. vio- seres humanos, pero es frecuente en animales.
laceum. Trichophyton soudanense es de origen africa-
no, se encuentran casos en Inglaterra, Alema-
Microsporum audouinii se encuentra en nia, Francia, Bélgica, Estados Unidos y Brasil.
algunas partes de África (Nigeria) y de manera Microsporum ferrugineum se encuentra en Asia,
aislada en el Reino Unido y este de Europa, fun- Lejano Oriente, oeste de África, este de Europa;
damentalmente. Ocasionó epidemias en Europa T. concentricum en parte de Asia, Oceanía, algu-
en el siglo xix, luego se exportó a América, y nas zonas de Latinoamérica y en México en la
recientemente se ha vuelto a observar en Holan- sierra norte de Puebla y los altos de Chiapas, y T.
da e Italia por inmigrantes africanos. Hace 50 yaoundei en África ecuatorial.
años prácticamente se extinguió, fue reempla-
zado por M. canis y en los últimos años por T. Las tiñas se observan con frecuencia alta
tonsurans; este último ocupa el primer lugar en en animales domésticos y salvajes, incluso roe-
frecuencia en tinea capitis en Estados Unidos, el dores; se hallan en los ganados bovino, porcino
y equino, así como las aves; las más afectadas
son las pequeñas especies, como perros y gatos.

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64 Sección II Micosis supericiales

Cuadro 6-1. Aspectos epidemiológicos y ecológicos de los dermatóitos

Dermatóitos

Antropóilos Zoóilos Geóilos No patógenos geóilos

E. loccosum Distribución cosmopolita M. anamorfo de A.
cookiellum
M. audouinii M. canis var. canis M. cookei
T. mentagrophytes T. ajelloi
M. equinum M. gypseum T. terrestre
var. interdigitale M. gallinae M. fulvum
T. rubrum E. stockdaleae
T. tonsurans T. equinum M. amazonicum
M. boullardii
T. violaceum T. mentagrophytes M. magellanicum
var. mentagrophytes M. ripariae
M. langeroni T. lavescens
T. verrucosum T. georgiae
M. rivalieri T. gloriae
M. ferrugineum* M. nanum† T. longifusum
T. concentricum**
T. gourvilli*** Distribución geográica limitada
T. megninii
T. schoenleinii M. canis var. M. praecox
T. soudanense*** distortum M. racemosum
T. yaoundei*** M. vanbreuseghemii
T. mentagrophytes T. phaseoliforme
var. erinacei

T. mentagrophytes
var. quinckeanum

M. persicolor

T. erinacei T. vanbreuseghemii

T. quinckeanum

T. gallinae

T. simii

†Geóilo y zoóilo; * Japón; ** Polinesia, México, Centroamérica y Sudamérica; *** África.

Alteran cualquier parte de la piel, en especial la se encuentra en Australia, Canadá, este de Euro-
cabeza, que presenta zonas escamosas a veces pa e Italia; Microsporum persicolor se asocia a
costrosas y alopecia. Microsporum nanum es pequeños roedores y ocasionalmente a infeccio-
geofílico, pero causa tiñas en cerdos; Micros- nes en seres humanos; Trichophyton simii causa
porum equinum afecta caballos y se encuentra tiñas en perros, changos, aves de corral y seres
fundamentalmente en África, Australia, Europa, humanos en la India.
Nueva Zelanda y América. Microsporum canis
se presenta en perros y gatos, T. gallinae afec- Tiña de la cabeza
ta aves. Trichophyton mentagrophytes varie-
dad erinacei (T. erinacei) causa tiñas en erizos Predomina en áreas rurales o suburbanas, es
en el Reino Unido y Nueva Zelanda. Tricho- más frecuente en campesinos y en personas de
phyton mentagrophytes variedad quinckeanum medio socioeconómico bajo. Es casi exclusiva

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Dermatoitosis 65

de niños (98%); a veces afecta mujeres des- sentan en 2 a 13% y en Japón en 0.5 a 2%. En
pués de la pubertad, alrededor de la menopausia 71% dependen de dermatóitos; constituyen 10 a
o ancianas; a últimas fechas, se han detectado 16.7% de las dermatoitosis; en niños se observan
adultos portadores asintomáticos en zonas urba- en 4 a 8%. Las ocasiona T. rubrum en 71 a 85%,
nas. Hace 50 años, su frecuencia en México era T. mentagrophytes variedad interdigitale en 22%
de 40 a 54%; hoy en día varía de 4 a 28%. En y ahora también son ocasionadas por hongos no
Asia, África, República Dominicana y en cier- dermatóitos en 4 a 5% y Candida en 10 a 20%(1
tas zonas urbanas de Estados Unidos y el Reino a 32% en uñas de pies y 51 a 70% en uñas de
Unido se presentan epidemias importantes que manos). En pacientes diabéticos y en aquéllos con
siguen a un contacto breve con un animal, otro síndrome de Down, la frecuencia es signiicativa-
niño o un adulto portador. mente mayor que en la población general (25%).

Tiña del cuerpo Formas profundas

Se observa en todas las latitudes, las altitudes y Son infrecuentes; el granuloma tricofítico pre-
los climas. Aparece en cualquier sexo y edad. domina en mujeres adultas. La enfermedad
En niños, predomina M. canis y T. tonsurans y, dermatofítica es excepcional, es casi exclusiva
en adultos, T. rubrum seguido de M. canis. En del norte de África. El seudomicetoma por der-
la República Mexicana, su frecuencia es de 7 a matóitos se ha descrito en inmunodeprimidos
25%; se presenta por igual en ambos sexos. y recientemente en el síndrome de inmunodei-
ciencia adquirida (SIDA).
El tokelau afecta grupos étnicos y áreas
geográicas especíicas. Se observa en las islas Factores predisponentes
del Pacíico, México, Centroamérica y Sudamé-
rica. En Mesoamérica ocurre en indígenas sin La humedad, el calor, los tratamientos con glu-
mezclas, quienes por lo general son de talla baja, cocorticoides, la diabetes y el uso de calzado
con piel bronceada y rasgos mongoloides. cerrado o de material sintético. Se relacionan
con mala higiene y la costumbre de no secarse
Tiñas de ingle y pies adecuadamente la piel, así como con la presen-
cia de un familiar afectado.
Predominan en varones adultos, su incidencia en
México es de 4 a 17% y de 20 a 51%, respectiva- Etiopatogenia
mente, pero se señala que la padece 30 a 70% de
la población general. Se encuentran portadores Los microorganismos causales se llaman derma-
sanos en 13.5%; durante los dos últimos decenios tóitos (cuadro 6-2), hongos queratinóilos que
ha aumentado la incidencia en niños, al parecer limitan su presencia a estructuras que contienen
sin predilección por sexo. Es más frecuente en queratina: pelos, uñas y capa córnea. Los propa-
áreas urbanas, así como en deportistas, militares, gules que transmiten la enfermedad son artroco-
nadadores y personas que por su ocupación usan nidios o clamidoconidios que se encuentran en
zapatos cerrados, botas o tenis; en mineros de los epitelios de descamación o en pelos.
alquitrán en Europa la frecuencia es de 35%.
Se han identiicado 43 especies anamorfas
Onicomicosis (cuadro 6-3), casi todas viven como sapróitos
del suelo y pueden aislarse por el método del
Son las onicopatías más frecuentes. Entre las anzuelo (cap. 5); sólo 11 se consideran impor-
enfermedades de la piel, abarcan cifras de 0.5 a tantes como agentes patógenos (cuadro 6-4). En
13%; la prevalencia es de 0.44%. Predominan teoría, todo dermatóito puede ocasionar cual-
de los 20 a 40 años de edad (48%). Estudios en quier tiña, o ésta puede depender de cualesquiera
el Reino Unido muestran onicomicosis en 2.7% de ellos; en la práctica hay ainidad preferencial
de la población mayor de 65 años y en 5% de la por las áreas afectadas (cuadro 6-5).
mayor de 75 años de edad; con una incidencia de
5 por 1 000 cada año; en Estados Unidos se pre- Los dermatóitos son hongos anamorfos
de los géneros Trichophyton, Microsporum y

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66 Sección II Micosis supericiales

Cuadro 6-2. Clasiicación taxonómica de los dermatóitos

Sexuados Reino Fungae
Asexuados División Eumycota
Subdivisión Ascomycotina
Clase Ascohymenomycetes
Orden Onygenales
Familia Arthrodermataceae (Gymnoascaceae)
Género
Arthroderma

Subdivisión Deuteromycotina
Clase Hyphomycetes
Orden Hyphomycetales
Familia Moniliaceae
Género
Epidermophyton

Microsporum

Trichophyton

Epidermophyton (cuadros 6-2 y 6-3); se distin- cada género (igs. 6-1 a 6-3). Para los dos pri-
guen entre sí por sus conidios, en especial por meros, sus teleomorfos (cuadro 6-2) pertenecen
los macroconidios, los cuales son especíicos de al género Arthroderma (cuadro 6-4) phylum

Cuadro 6-3. Clasiicación de géneros y especies anamorfos de dermatóitos

Epidermophyton (Sabouraud, 1907) Trichophyton (Malmsten, 1845)
* E. loccosum ([Harz] Langeron y Milochevitch, 1930) T. ajelloi ([Vanbreuseghem] Ajello, 1968)

E. stockdaleae (Prochacki y Engelhard-Zasada, 1974) * T. concentricum (Blanchard, 1895)
Microsporum (Gruby, 1843) T. equinum ([Matruchot y Dassonville] Gedoelst, 1902)
T. lavescens (Padhye y Carmichael, 1971)
M. amazonicum (Moraes, Borelli y Feo, 1967) T. georgiae (Varsavsky y Ajello, 1964)
M. anamorfo de Arthroderma cookiellum ([de Clercq] T. gloriae (Ajello, 1967)
T. gourvilii (Catanei, 1933)
Weitzman, McGinnis, Padhye y Ajello, 1985) T. longifusum ([Florian y Galgoczy] Ajello, 1968)
M. audouinii (Gruby, 1843) T. mariatii (Tapia de Fossaert, Mizrachi, Padhye y
M. langeroni (Vanbreuseghem, 1950) Ajello, 1980)
M. rivalieri (Vanbreuseghem, 1963) T. megninii (Blanchard, 1896)
M. boullardii (Dominik Majchrowitz, 1965)
* M. canis ([Bodin] Bodin, 1902 var. canis) * T. mentagrophytes ([Robin] Blanchard, 1896)
M. cookei (Ajello, 1959) T. phaseoliforme (Borelli y Feo, 1966)
M. eguinum ([Delacroix y Bodin] Gueguen, 1904)
M. ferrugineum (Ota, 1921) * T. rubrum ([Castellani] Sabouraud, 1911)
M. fulvum (Uriburu, 1909) * T. schoenleinii (Lebert] Langeron y Milochevitch, 1930)
M. gallinae ([Megnin] Grigorakis, 1929)
* M. gypseum ([Bodin] Guiart y Grigorakis, 1928) T. simii ([Pinoy] Stockdale, Mackenzie y Austwick,
* M. nanum (Fuentes, 1956) 1965)
M. persicolor ([Sabouraud] Guiarry Grigorakis, 1928)
M. praecox (Rivalier, 1954) T. soudanense (Joyeux, 1912)
M. racemosum (Borelli, 1965) T. terrestre (Durie y Frey, 1957)
M. ripariae (Hubalek y Rush-Munro, 1973) * T. tonsurans (Malmsten, 1945)
M. vanbreuseghemii (Georg, Ajello, Friedman y T. vanbreuseghemii (Rioux, Tarry y Tuminer, 1964)
* T. verrucosum (T. ochraceum) (Bodin, 1902)
Brinkman, 1962) * T. violaceum (Bodin, 1902)
T. yaoudei (Cochet y Doby Dubois, 1957)

* Especies patógenas importantes.

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Dermatoitosis 67

Cuadro 6-4. Relación del estado teleomorfo y anamorfo de los dermatóitos

Teleomorfo Anamorfo

Arthroderma (Currey y Berkeley emend. Weitzman, Microsporum (Gruby, 1843)
McGinnis, Padhye y Ajello, 1986) Trichophyton (Malmsten, 1845)

A. benhamiae (Ajello y Cheng, 1967) T. mentagrophytes
A. borellii ([Moraes, Padhye y Ajello] Padhye, Weitzman, M. amazonicum

McGinnis y Ajello, 1986) M. cookei
A. cajetani ([Ajello] Ajello, Weitzman, McGinnis y Padhye, T. georgiae

1986) Microsporum anamorfo de A.
A. ciferri (Varsavsky y Ajello, 1964) cookiellum
A. cookielum ([de Clercq] Weitzman, McGinnis, Padhye y
M. boullardii
Ajello, 1986) T. lavescens
A. corniculatum ([Takashio y de Vroey] Weitzman,
M. fulvum
McGinnis, Padhye y Ajello, 1986) T. vanbreuseghemii
A. lavescens (Padhye y Carmichael, 1971) T. gloriae
A. fulvum ([Stockdale] Weitzman, McGinnis, Padhye y
M. vanbreuseghemii
Ajello, 1986)
A. gertleri (Bohme, 1967) M. gypseum
A. gloriae (Ajello, 1967)
A. grubyi ([Georg, Ajello, Friedman Brinkman] Ajello, M. gypseum
T. terrestre
Weitzman, McGinnis y Padhye, 1986) T. terrestre
A. gypseum ([Nannizzi] Weitzman, McGinnis, Padhye y
M. nanum
Ajello, 1986) M. canis var. canis
A. incurvatum ([Stockdale] Weitzman, McGinnis, Padhye y M. canis var. distortum

Ajello, 1986) M. persicolor
A. insingulare (Padhye y Carmichael, 1972)
A. lenticularum (Pore, Tsao Plunkett, 1965) T. terrestre
A. obtusum ([Dawson y Gentles] Weitzman, McGinnis, T. simii
M. racemosum
Padhye y Ajello, 1986)
A. otae ([Hasegawa y Usui] McGinnis, Weitzman, T. ajelloi
Padhye y Ajello, 1986) T. mentagrophytes
A. persicolor ([Stockdale] Weitzman, McGinnis, Padhye y

Ajello, 1986)
A. quadriidum (Dawson y Gentles, 1961)
A. simii (Stockdale, Mackenzie Austwick, 1965)
A. racemosum ([Rush-Munro, Smith y Borelli] Weitzman,

McGinnis, Padhye y Ajello, 1986)
A. uncinatum (Dawson y Gentles, 1961)
A. vanbreuseghemii (Takashio, 1973)

Ascomycota, y ya se ha descartado Nannizzia rísticas taxonómicas, isiológicas, antigénicas
que anteriormente era la forma teleomorfa de y patógenas similares, y sólo presentan leves
Microsporum; las diferentes especies pueden diferencias nutricionales y enzimáticas. Con
ser de signo positivo (+) o negativo (–). No se base en su distribución ecológica, se dividen en
ha descrito forma perfecta para el tercer género, geóilos (telúricos), zoóilos y antropóilos, y se
que únicamente presenta dos especies y sólo una difunden del suelo al ser humano, de los ani-
es patógena para seres humanos (E. loccosum) males a éste o de persona a persona, de manera
(cuadro 6-3). directa o a través de fómites (cuadro 6-1). Los
hongos geofílicos se consideran ancestros de
Los dermatóitos constituyen un grupo los dermatóitos patógenos; los zoofílicos han
extenso y homogéneo de hongos con caracte-

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Cuadro 6-5. Frecuencia de derma

Dermatóito Tinea capitis Tinea favica Tinea barbae Tinea corporis
• • •••
* M. canis ••• •
• •
www.FreeLibros.com ** M. gypseum • •
••• •• •••
*** M. audouinii • •••
••
** M. nanum •
••
* T. rubrum • •• •
•• ••
* T. tonsurans •••
••
** T. violaceum •

** T. concentricum

*** T. megnini ?

** T. verrucosum •

* T. mentagrophytes ••

*** T. schoenleinii

* E. loccosum

* = muy frecuente; ** = poco frecuente; *** = excepcional; ••• = muy frecuente; •• = frecuencia mo

atóitos y relación con dermatoitosis Tinea pedis Tinea unguium
s Tinea imbricata Tinea cruris Tinea manuum •

••• ••• ••• •••
•
•

•••

•• • •• var. interdigitale •
•
••
oderada; • = poco frecuente. ••

Género Trichophyton Dermatoitosis 69

Microconidios Macroconidios
en salchicha
T. tonsurans
T. rubrum
Microconidios redondos Candelabro fávico
en racimos

Hifas en zarcillos T. schoenleinii
y tirabuzón

T. mentagrophytes

T. violaceum
T. verrucosum

Fig. 6-1. Género Trichophyton, esporas asexuadas. (Modiicada de Segretain G, Mariat F, Drouhet E. Diagnostic de
laboratoire en mycologie médicale. Paris: Maloinc, 1979.)

Género Microsporum

M. cookei M. gallinae

M. distortum M. vanbreuseghemii

Macroconidios Macroconidios
con más de hasta con
seis lóculos seis lóculos

M. canis M. gypseum

Macroconidios
enanos

Macroconidios
deformados

M. audouinii M. nanum

Fig. 6-2. Género Microsporum, esporas asexuadas. (Modiicada de Segretain G, Mariat F, Drouhet E. Diagnostic de
laboratoire en mycologie médicale. Paris: Maloinc, 1979.)

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70 Sección II Micosis supericiales

Género Epidermophyton que actúan como factores de virulencia; las que-
ratinasas o proteasas digieren queratina y liberan
Macroconidios antígenos (glucoproteínas) fúngicos; elastasas
en mazo relacionadas con enfermedad aguda y lipasas
vinculadas con enfermedad crónica. En algunos
Clamidosporas pacientes, hay reacción inlamatoria intensa;
en otros, es mínima e incluso puede haber un
E. floccosum comensalismo asintomático entre hongo y hués-
ped; en la mayoría, la principal característica es
Fig. 6-3. Género Epidermophyton, conidios caracterís- un iniltrado linfohistiocitario perivascular en
ticos. (Modiicada de Segretain G, Mariat F, Drouhet E. dermis supericial, y en fases tempranas de lesio-
Diagnostic de laboratoire en mycologie médicale. Paris: nes muy inlamatorias hay acumulación perifoli-
Maloinc, 1979.) cular de neutróilos; más tarde, aparecen células
gigantes alrededor de los folículos destruidos.
evolucionado gradualmente del suelo hacia los
animales y los antropofílicos a partir de especies El grado de respuesta depende de dos facto-
zoofílicas; esta evolución es paralela a la pérdi- res: 1) de la especie causal; se ha observado que
da de conidios, así como a su habilidad para la las cepas de morfología granular tienen produc-
reproducción sexual y su asociación con infec- ción alta de enzimas; también es probable que
ciones crónicas. Por deinición, no se consideran algunas cepas produzcan sustancias que eliminan
dermatóitos los mal llamados dermatóitos del las bacterias adyacentes y se sabe que la produc-
suelo que no son patógenos para seres humanos, ción de artroconidios se relaciona con la forma
como T. ajelloi (cuadro 6-1). parasitaria (las cepas zoofílicas y geofílicas gene-
ran mayor inlamación), y 2) del grado de hiper-
Para adquirir la enfermedad, se precisa con- sensibilidad del huésped; incluso se ha propuesto
tacto con la fuente: suelo o animales, o puede una actividad reguladora de proteasa, y quizás
transmitirse de una persona a otra o por fómites. inluya la temperatura y la localización de la
Tal vez haya predisposición genética o resis- enfermedad. Hay respuesta IgG, IgM, IgA e IgE,
tencia natural a la infección, quizá dada por un y cierta evidencia de que los mananos producidos
factor sérico no bien deinido o un antígeno de por el hongo suprimen o disminuyen la respuesta
histocompatibilidad (HLA). inlamatoria. El desarrollo de inmunidad celular
(IC) correlaciona hipersensibilidad retardada y
En algunas localizaciones, actúan como se asocia a curación clínica y eliminación del
factores favorecedores: humedad, maceración, dermatóito; mientras que la falta o los defectos
oclusión y traumatismos. No se ha establecido de la IC predisponen al huésped a dermatoitosis
bien la participación del recambio epidérmico o crónica o recurrente.
de la actividad de las queratinasas, ni la inluen-
cia del sudor, pero estas dermatomicosis son más La infección se explica de la siguiente mane-
frecuentes en climas tropicales. ra: cuando una espora se deposita en la supericie
de la piel, se reproduce en la capa córnea; inicial-
Los dermatóitos inician la infección por un mente origina una pápula y luego una lesión anular
fenómeno de adherencia a la capa córnea; des- por la extensión radiada de los ilamentos (ig. 3-5,
pués, estos elementos germinan y empiezan la cap. 3), también ocurre parasitación de los vellos y
invasión de los queratinocitos; la infección se de este modo actúan como reservorios. En la piel
conina al estrato córneo y los anexos, excep- cabelluda, el hongo se reproduce en la capa córnea
cionalmente se afecta la capa granulosa. La y (a nivel del oriicio folicular) penetra e invade la
colonización produce una reacción del huésped vaina del pelo (ig. 6-4); se extiende hacia la pro-
debida a los productos metabólicos del hongo fundidad sin sobrepasar la zona queratógena (fran-
ja de Adamson) (el crecimiento de hifas y esporas
ocurre en sentido opuesto al crecimiento del pelo);
al mismo tiempo, se extiende hacia la parte distal
del pelo y lo transforma en un pelo grueso y frágil
que se rompe con facilidad (pelo tiñoso).

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Dermatoitosis 71

A B C D EF En las modalidades inlamatorias (querión),
la intensidad depende del grado de hipersensibi-
Fig. 6-4. A. Colonización de piel cabelluda, B. Parasita- lidad; se establece cierto equilibrio entre hués-
ción inicial del pelo, C. Dirección de la invasión, franja ped y parásito, pero al inal gana el primero al
de Adamson (lecha), D. Pelo tricofítico (endothrix), E. eliminarse el hongo, casi siempre con todo el
Pelo microspórico (ectoendothrix), F. Parasitación tipo folículo piloso. En pies, la lora bacteriana, la
fávico. (Modiicada de Albanese GC, Aste N, Biggio P humedad o la sudación contribuyen a los sín-
et al. Epidemiologia, eziologia, patogenesi della tinea tomas. La reacción tipo “ide” se genera por la
capitis. G Ital Dermatol Venérol, 1999;134.451-459.) circulación de productos alergenos, formados
a partir de una infección primaria a menudo
inlamatoria en cabeza o pies (tricofítides). En
las formas profundas, el granuloma perifolicular
se origina por la penetración en la dermis de un
pequeño fragmento de pelo parasitado; para ello
casi siempre se requiere un traumatismo o inmu-
nodepresión.

Aún no se esclarecen las alteraciones inmu-
nitarias; es probable que las células de Langer-
hans de la epidermis procesen los productos

Los artroconidios pueden invadir la vaina Cuadro 6-6. Tipos de parasitación del pelo
del pelo sin destruir la cutícula (endothrix) o per- y luorescencia in vivo en dermatóitos
forar y alterar esta última, produciendo una vaina
externa de conidios (ectoendothrix). En el primer Fluorescente No luores-
caso, el pelo se rompe en la salida del folículo y, cente
en el segundo, unos cuantos milímetros después
de la salida (cuadro 6-6); salvo en T. schoenleinii I Ectoendothrix (Ectothrix clásico)
que tiene actividad enzimática limitada y el pelo
conserva su resistencia mecánica y presenta sólo Microspórico M. audouinii M. gypseum
modiicaciones de color y brillantez. La relativa M. canis y var. M. fulvum
resistencia a la infección pospubescente de tinea M. nanum
capitis se debe a la presencia de ácidos grasos de distortum M. vanbreu
cadenas largas, y cuando la tiña aparece en adul- M. ferrugineum
tos, lo hace de preferencia en edad posmenopáu- M. langeroni seghemii
sica, seguramente por variaciones cuantitativas y M. rivalieri M. gallinae
cualitativas del sebo, en particular de los ácidos
grasos de cadena mediana. Microide T. mentagro-
phytes
En uñas, el dermatóito penetra por la que-
ratina blanda del hiponiquio, por el borde lateral T. rubrum
de la uña, o por la lúnula, y afecta al eponiquio; T. megninii
casi nunca lo hace por la supericie de la lámina
ungueal. Después afecta el lecho y en la uña mis- Megasporado T. verruco-
ma, por actividad enzimática, se extiende por una sum
red de túneles excavados en la queratina dura sin
invadir la matriz (red transversa de Alkiewics). El II Endothrix
hongo penetra en los corneocitos o sólo los sepa-
ra mecánicamente. Las hifas se dirigen hacia la Tricofítico T. tonsurans
matriz a una velocidad mayor que el crecimiento T. violaceum
ungueal en dirección contraria y la mayoría con- T. soudanense
serva una posición transversal. T. yaoundei
T. gourvilii
T. rubrum

(infrecuente)

Fávico T. schoenleinii

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72 Sección II Micosis supericiales

metabólicos del hongo y los presenten a neu-
tróilos y linfocitos. Se ha encontrado depresión
especíica de la inmunidad celular en las infec-
ciones localizadas, e inespecíica en las genera-
lizadas. Tampoco se conoce bien la participación
de la inmunidad humoral. Se han encontrado
alfa-2-macroglobulinas en el suero, las cuales
actúan como blanqueadores especíicos al inhi-
bir enzimas proteolíticas producidas por los der-
matóitos. No hay correlación entre la presencia
de anticuerpos y resistencia a la infección; en
piel cabelluda, suele haber esta última; en con-
traste, en los pies la recurrencia o exacerbación
es la regla.

Clasiicación A

I. Formas supericiales: II. Formas profundas: B
Fig. 6-5. Tiña de la cabeza. A, tricofítica; B, microspó-
Tiña de la cabeza Dermatoitosis rica.
Tiña del cuerpo inlamatorias
Tiña imbricada
Tiña inguinal Querión de Celso
Tiña de la mano Favus
Tiña de los pies Tiña de la barba
Tiña de las uñas Granuloma

tricofítico
Seudomicetoma
Enfermedad

dermatofítica
(Hadida)

Cuadro clínico

La incubación dura días a semanas, en promedio Las tiñas tricofíticas originan alopecia difu-
7 a 15 días. Las manifestaciones clínicas varían sa con placas pequeñas e irregulares intercaladas
según la localización y dependen del agente cau- con los pelos sanos; en ocasiones, se observan
sal. Las formas supericiales pueden afectar la sólo como puntos negros (granos de pólvora) y
piel lampiña, el pelo o las uñas; la enfermedad puede haber lesiones muy pequeñas, con afección
dermatofítica y el seudomicetoma son excepcio- de dos a tres pelos (ig. 6-6). Las tiñas microspó-
nales (cap. 12). ricas originan una o pocas placas redondeadas,
de mayor tamaño que las anteriores, casi siem-
Tiña de la cabeza o tinea capitis pre de varios centímetros de diámetro; todos los
pelos cortos se encuentran al mismo nivel y dan
Es propia de los niños ya que cura sola en el la impresión de haber sido cortados con segado-
momento de la pubertad. Puede ser seca o inla- ra de césped; las placas están bien limitadas (ig.
matoria. 6-5). En ambas variedades clínicas, el prurito es
mínimo.
La variedad seca se maniiesta por descama-
ción y “pelos tiñosos”: pelos cortos (2 a 3 mm) El querión de Celso es una tiña inlamato-
gruesos, quebradizos, deformados y, en ocasio- ria causada sobre todo por M. canis y T. men-
nes, con una vaina blanquecina, que recuerdan el tagrophytes. Se maniiesta por un plastrón
aspecto de “patitas de araña” (ig. 6-5). inlamatorio constituido por pústulas y abscesos

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Dermatoitosis 73

Fig. 6-6. Tiña tricofítica en una mujer adulta. Fig. 6-8. Querión de Celso, alopecia importante.

múltiples; hay adenopatías satélite y dolor a la informado unos pocos casos verdaderos y otros
presión, pero no iebre; en las etapas iniciales es que probablemente afectan cara o piel cabelluda
una foliculitis y, en las avanzadas, constituye el sin pelo.
querión verdadero (ig. 6-7). Tomó este nombre
de su aspecto, pues el término en griego signii- La ubicación cefálica en adultos es excep-
ca “panal”. La alopecia es muy importante y es cional aunque se han registrado casos en ancia-
difícil encontrar pelos tiñosos; sin tratamiento, nas de más de 70 años de edad y casi nunca en
puede dejar alopecia deinitiva (ig. 6-8). varones (ig. 6-6); como agentes causales en esta
edad se han informado T. tonsurans, M. canis y
Algunos dermatóitos, como T. verruco- T. rubrum, fundamentalmente.
sum, originan querión con grandes ulceraciones.
Microsporum gypseum, T. violaceum y otros son Para ines prácticos el favus, o tiña fávica, es
poco frecuentes como agentes etiológicos en causado principalmente por T. schoenleinii y, en
México. Trichophyton rubrum casi nunca oca- ocasiones, por M. gypseum u otros dermatóitos;
siona tiña de la cabeza y generalmente induce se caracteriza por escútulas, es decir, cazoletas
la formación de zonas alopécicas de 1 a 2 cm constituidas por masas de ilamentos y cubier-
de diámetro o lesiones pustulares en placas alo- tas por costras amarillentas que dan el aspecto
pécicas irregulares. Epidermophyton loccosum de miel en el panal (favus = panal), despiden un
nunca genera tiña de la cabeza, aunque se han olor característico a “ratón mojado” y dejan alo-
pecia cicatrizal (ig. 6-9). La evolución es cróni-
ca, sin tendencia a la involución. También puede
haber lesiones cutáneas o ungueales.

Fig. 6-7. Querión por T. tonsurans, aspecto de “panal”. Tiña del cuerpo, tinea corporis
o herpes circinado

Es una tiña de la piel glabra (lampiña); se carac-
teriza por placas eritematoescamosas redondea-
das, con bordes activos vesiculosos; se extiende
en dirección excéntrica y deja la parte central
sana o con poca descamación (ig. 6-10).

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74 Sección II Micosis supericiales

Fig. 6-9. Favus causado por M. gypseum. Fig. 6-11. Epidermoitosis de la zona del pañal (E. loc-
cosum).

Hay prurito leve, la evolución es crónica o la zona del pañal, que se origina fundamental-
pueden curar solas. La variedad microspórica mente por E. loccosum; se presenta en menores
origina placas pequeñas (0.5 a 2 cm de diámetro) de tres años de edad y afecta la zona del pañal y
y múltiples, se presenta en cualquier parte de la las partes vecinas. Se caracteriza por placas erite-
piel, pero más en partes expuestas. A menudo se matoescamosas anulares, con algunas pápulas y
observan epidemias familiares con una fuente vesículas que dejan áreas de piel sana (ig. 6-11).
común (perro o gato infectado por M. canis).
En regiones tropicales, se han observado
La tricofítica genera placas de mayor tamaño adultos con epidermoitosis muy extensas hiper-
y en menor número; a veces se forman círculos queratósicas y de aspecto verrugoso. Tinea cor-
concéntricos; en niños, predomina T. tonsurans poris gladiatorum o tricoitosis de los gladiadores
y, en adultos, T. rubrum; las placas son con- se presenta en luchadores de cuerpo a cuerpo, es
luentes, por lo que alcanzan gran tamaño, y son una tiña del cuerpo que afecta fundamentalmente
policíclicas o irregulares. Puede afectar cejas y cabeza, cuello y brazos, y es producida casi siem-
pestañas, pero nunca pelos axilares o púbicos. pre por T. tonsurans.
Por contigüidad, llega a afectar mucosa nasal,
labios o conducto auditivo externo. Tiña imbricada, tinea imbricata,
tokelau o chimberé
Otra variedad poco frecuente es la dermato-
itosis glútea dermatofítica o epidermoitosis de

AB Es causada por T. concentricum; se presenta en
áreas rurales y en determinadas zonas geográi-
Fig. 6-10. Tiña del cuerpo. A, microspórica (por M. cas y grupos étnicos; es probable que haya pre-
canis); B, tricofítica (por T. tonsurans). disposición genética, se ha propuesto un patrón
autonómico dominante, aunque también se ha
señalado una herencia recesiva de susceptibili-
dad; al parecer se transmite por contacto directo
de una persona a otra. Es la más seca y supericial
de las tiñas; se caracteriza por escamas que se
adhieren por uno de sus bordes, muestran dispo-
sición concéntrica y adoptan aspecto de encaje o
arabesco; están muy diseminadas y son simétri-
cas (ig. 6-12). Las formas clínicas dependen de
su aspecto: concéntrico, laminar, liqueniicado,
en placas, anular, palmoplantar y onicomicosis.
No altera pliegues, palmas, plantas ni piel cabe-

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Dermatoitosis 75

Fig. 6-12. Tokelau en indígenas mayas (T. concentri-
cum).

lluda. En ocasiones afecta las uñas, pero no se ha
deinido si es por este dermatóito u otro.

Tiña de la ingle, tinea cruris Fig. 6-13. Tiña de la ingle.
o eccema marginado de Hebra
Tiña de las manos o tinea manuum
Predomina en varones adultos, pero se llega a
observar en mujeres y niños. Afecta una o ambas La causa primordial es T. rubrum (90%); pre-
regiones inguinales, puede extenderse a perineo, domina en varones adultos y es infrecuente en
región púbica, abdomen y nalgas, pocas veces niños. Los factores predisponentes son ocupa-
afecta escroto y pene. Se caracteriza por placas ción manual y sudación. Afecta una o ambas
eritematoescamosas con bordes vesiculosos; casi palmas de las manos, predomina en la izquierda
nunca hay pústulas (ig. 6-13). La evolución es de acuerdo con un estudio extenso en musulma-
crónica y pruriginosa, lo cual puede dar lugar a nes. La forma crónica es la más frecuente; se
pigmentación y liqueniicación. Si la infección maniiesta por anhidrosis, hiperqueratosis difusa
se limita a ingles, quizá dependa de E. locco- y descamación pulverulenta o placas eritema-
sum; si es diseminada, de T. rubrum, y si es inla- toescamosas; hay acentuación de los pliegues de
matoria, de T. mentagrophytes. Es frecuente en lexión (ig. 6-15). Con base en las característi-
zonas calurosas y en quienes permanecen senta-
dos mucho tiempo.

Tiña de la barba, tinea barbae
o sicosis dermatofítica

Se origina sobre todo por T. mentagrophytes, T. Fig. 6-14. Sicosis de la barba por T. rubrum.
rubrum y T. verrucosum. Es exclusiva de varones
adultos; afecta la zona de la barba o el cuello.
Se caracteriza por pústulas foliculares aisladas o
agrupadas, de evolución crónica y que dejan alo-
pecia cicatrizal (ig. 6-14). No debe confundirse
con la localización facial de la tiña del cuerpo,
que genera placas anulares supericiales (ig.
6-10).

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