7 PANDUAN MUDAH TERNAKAN IKAN PATIN - JPPKK

Anggaran jumlah benih dengan kaedah volumetrik

Kaedah ini biasanya digunakan untuk mengira jumlah larva ikan yang
baru menetas. Ia banyak digunakan dalam industri pembenihan ikan
dan udang kerana kebanyakkan larva yang baru menetas bersifat
terapung dalam air.

Langkah 1: Kumpulkan Langkah 2: Kacau air untuk
semua anak benih ke dalam memastikan semua benih
satu besen 5L berada di seluruh column air
dengan sekata

Langkah 3: Terbalikan satu Langkah 4: Kira benih yang
ada di dalam tabung 17ml
tabung 10ml dan dan ulang sebanyak 3 kali.

memasukkan air apabila 46 | P a g e

berada di dalam air.

Langkah 5: Dapatkan purata dan darabkan dengan jumlah volume air
yang ada dalam bekas 5L untuk mendapatkan jumlah benih dalam
besen
Contoh:
Satu sampel 17ml terdapat 115 ekor, 120 ekor, 150 ekor.
Purata adalah128 ekor.
Baldi 5 Liter bahagi 17ml adalah 294 kali.
Jumlah benih dalam 5 Liter= 128 ekor x 294 kali =37, 647 ekor

47 | P a g e

ANGGARAN JUMLAH MAKANAN HARIAN

1 Kira Average Body weight Ikan

ℎ ( ) = ℎ
ℎ

*Jika jumlah berat ikan ditambah sebanyak 10 kali maka perlu
dibahagikan dengan 10 juga. Jika ditambah 30 kali maka dibahgi
dengan 30.

2 Kira kadar hidup ternakan

(%) = Jumlah Asal − Jumlah mati 100
Jumlah Asal

3 Kira berat keselurahan ikan (Biomass)
= ( ) ℎ ( )

4 Tentukan peratus makanan

Saiz ikan tilapia / puyu / patin (g) Kadar makanan (%)

0.02 – 1 15-20

1 –5 15-10

5 – 20 7-10

20 – 50 4-7

50 – 250 1.5-3.5

Lebih daripada 250 1

48 | P a g e

Saiz ikan keli (g) Kadar makanan (%)
1-20 5
21-40 4
41-60 3
61-80 3
80 – 250 2

*Kadar peratusan ini bergantung atas kesihatan ikan, kualiti air serta
kadar protein yang diberi.

5 Kira jumlah makanan ikan untuk sehari
ℎ = ( ) (%)

6 Kira jumlah makanan ikan untuk pagi atau petang

Anggaran jumlah makanan sehari biasanya dibahagi kepada 2 kali
sehari tetapi ia bergantung kepada keperluan dan tahap perkembangan
benih ikan.

 Jika 2 kali sehari, maka pagi akan diberi pada kadar 50% dan
petang pada kadar 50%.

 Jika 3 kali sehari, maka pagi diberi sebanyak 33%, tengahari 33%
dan petang 33%.

Akan tetapi, kadar ini juga boleh diubah mengikut kesesuaian tempat
ladang dan cuaca pada hari tersebut. Contoh, hujan renyai pada awal
pagi tersebut dan berhenti, pemberian makanan hanya diberi sebanyak
40% pada waktu pagi dan 60% diberi pada waktu petang.

49 | P a g e

7 Rekod hasil pengiraan pemberian makanan ikan

REKOD TERNAKAN IKAN

NO. KOLAM : ________________ TARIKH PELEPASAN: ____________
SPESIES TERNAKAN: _____________
JUMLAH PELEPASAN : ________________ KELUASAN KOLAM: _____________

KADAR PELEPASAN : ________________

Umur Kadar Makanan Makanan Jumlah Jumlah Purata Catatan
ikan Tarikh Makan Pagi (g) Petang (g) Makanan Mati Berat
1 Sehari (ekor)
2 (g) (g)
3 (%)
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25

(%) = Jumlah Asal − Jumlah mati 100
Jumlah Asal

50 | P a g e

PANDUAN 5 : PEMBENIHAN IKAN PATIN

BAHAN PERALATAN
Hormon Jarum Suntikan (3ml @ 5ml)
Induk Ikan Patin Dulang
Air Terawat Mangkuk
Sarung Tangan Kain Sudu
Kain Tuala Kecil Tangki
Bulu ayam Tiub Pengudaraan
Vaseline Batu pengudaraan
Jaring penetasan

OVAPRIM
OVATIDE
PG
HCG
OVAPLANT

51 | P a g e

Kaedah Suntikan Intraperitoneal(rongga
badan/kaviti badan)

Intramuskular (dalam
otot)

52 | P a g e

TETAPKAN NISBAH INDUK JANTAN:BETINA (2:1)
PILIH INDUK JANTAN DAN BETINA YANG MATANG DAN BERKUALITI

TIMBANG BERAT INDUK DAN KIRA JUMLAH HORMON
SUNTIKAN PERTAMA:SUNTIK HORMON KE DALAM OTOT INDUK BETINA
SUNTIKAN KEDUA:SELEPAS 8-10 JAM DARI SUNTIKAN PERTAMA(INDUK

BETINA+ INDUK JANTAN)
LEPASKAN INDUK JANTAN DAN BETINA DI DALAM INDUK YANG

BERASINGAN
LAKUKAN PEMANTAUAN SECARA BERKALA

LERET TELUR DARI INDUK BETINA
LERET SPERMA DARI INDUK JANTAN
GAULKAN TELUR DAN SPERMA DI DALAM BEKAS YANG BERSIH
TEBAR TELUR TERSENYAWA DALAM DULANG PENETASAN
LAKUKAN PEMERHATIAN SEHINGGA TELUR MENETAS

53 | P a g e

SEDIAKAN BAHAN DAN
PERALATAN

PILIH INDUK YANG
MATANG

PERIKSA TAHAP
KEMATANGAN

TELUR

54 | P a g e

TIMBANG INDUK DAN
TENTUKAN DOS HORMON

SUNTIKAN 1:
SUNTIK HORMON PADA

INDUK BETINA
(KEDUDUKAN JARUM

45°)
SUNTIKAN 2:
SUNTIK HORMON PADA
INDUK BETINA+ JANTAN
(8 JAM KEMUDIAN)

MASUKKAN INDUK YANG
TELAH DISUNTIK KE DALAM

TANGKI KUARANTIN
SECARA BERASINGAN

LERET TELUR INDUK
BETINA SELEPAS 8
JAM DARI SUNTIKAN

KE-2

55 | P a g e

LERETKAN SPERMA KE
DALAM BEKAS YANG
MENGANDUNGI TELUR

GAULKAN SPERMA DAN
TELUR SECARA SEKATA

TEBARKAN TELUR YANG
DIGAUL KE ATAS JARING

PENETASAN
BIARKAN TELUR SELAMA

24-48 JAM UNTUK
PENETASAN BERLAKU

56 | P a g e

PANDUAN 6 : PEMERIKSAAN KUALITI AIR IKAN
PATIN

Pengawalan kualiti air amat penting dalam setiap projek ternakan ikan.
Kualiti air menjadi penentu kejayaan sesuatu projek samada berjaya
atau gagal. Oleh itu adalah penting bagi para penternak memahami
kehendak ikan yang diternak bagi mendapatkan hasil yang tinggi seperti
yang diharapkan. Selain itu,masalah penyakit juga boleh dielakkan
dengan adanya pengurusan mutu air yang baik. Parameter air yang baik
untuk ternakan ikan patin seperti jadual di bawah :

Parameter Julat Sesuai
Suhu 25-32 ˚C
Oksigen terlarut >2.5 ppm
pH 6.5 -8.5
Ammonia (NH3) < 0.02 ppm
Nitrit <0.1 ppm
Nitrat <1.0 ppm
Kekeruhan (cakera sechi) 25-50 cm
Saliniti 0 ppm

57 | P a g e

Oksigen
Terlarut

Saliniti Suhu

PARAMETER AIR

Kekeruhan pH

Ammonia

Oksigen terlarut (Dissolve Oxygen,DO) merupakan satu parameter
terpenting dalam ternakan akuakultur. Julat oksigen terlarut yang sesuai
untuk ternakan ikan adalah 5mg/l keatas. Sungguh pun demikian, ikan
patin mampu hidup dalam persekitaran yang rendah kandungan
oksigen. Ini adalah kerana ikan patin tidak bergantung kepada insang
sepenuhnya untuk mendapatkan oksigen sebaliknya mendapatkan
oksigen dari permukaan air.

Jadual di bawah menunjukkan tahap kandungan oksigen terlarut yang
selamat dan bahaya kepada ternakan akuakultur.

UNIT (mg/l atau ppm)

12345678

Bahaya Awas Selamat

58 | P a g e

Kandungan oksigen yang rendah menjurus kepada kematian ikan yang
banyak, samada secara langsung atau tidak langsung. Jumlah oksigen
yang diperlukan oleh ikan adalah berbeza bergantung kepada saiz,
kadar makan, tahap aktiviti, dan juga suhu. Anak ikan memerlukan
jumlah oksigen yang lebih dibandingkan dengan ikan yang lebih besar,
kerana kadar metabolik anak ikan adalah lebih tinggi . Kandungan
oksigen didalam air boleh ditingkatkan dengan kaedah mekanikal seperti
penggunaan blower, paddlewheel, waterpump dan sebagainya. Bacaan
DO boleh diperoleh menggunakan probe atau DO test kit.

Manual Pengguna
Picagari

Botol sampel (plastic)

Jenama : HANNA Instruments Balang Sampel (Kaca)
Model : HI 3810 Magnesium Sulphate Solution
Awas : Perhatikan tarikh luput penggunaan
Titrant Solution
Alkali-Azide Reagent
Sulphuric Acid Solution

Starch Indicator

Nama bahan
59 | P a g e

1.Isi air sampel 2.Titiskan 5 titis 3.Tutup dan goncangkan botol.
dalam botol manganous Biarkan 2 minit

kaca sehingga sulphate solution
paras yang & 5 titisan alkali
dihadkan – azide reagent.

6.Titiskan 1 Titisan 5.Isi air sampel 4.Titiskan 10
starch indicator dan ke dalam bikar Titisan
goncang. Air sample akan plastik ( 5 ml )
sulphuric acid
bertukar solution
ke warna biru / ungu (Goncang
).Biar

mendakan
turun

7.Guna Picagari 8.Titiskan perlahan- 9. Baca takat picagari
sedut larutan lahan ( Goncang ) kemudian darabkan
sehingga Warna bacaan picagari
Titrant Hi 3810 dengan 10 untuk
sebanyak 1ml. Cecair Sampel mendapatkan kadar
bertukar dari biru ke DO

tanpa warna

6.1 Cara-cara menguji oksigen terlarut dalam air (Dissolve Oxygen)

60 | P a g e

Selepas kandungan oksigen terlarut, suhu air merupakan satu faktor
yang penting kepada ikan. Perlu diketahui ikan adalah organisma
berdarah sejuk dan mempunyai suhu badan yang sama dengan suhu
persekitarannya. Suhu air akan memberi kesan keatas aktiviti,
pergerakan, makan, tumbesaran dan pembiakan semua ikan. Secara
amnya julat suhu yang sesuai bagi ikan-ikan dikawasan tropika adalah
diantara 25-32o C .Antara alatan yang boleh digunakan untuk menguji
suhu adalah jangka suhu (thermometer) dan probe

1. Masukkan alatan di permukaan air dan biarkan seketika sehingga bacaan stabil
2. Dapatkan bacaan suhu

6.2 Kaedah menguji suhu menggunakan probe/ thermometer

61 | P a g e

pH merupakan unit mengukur keasidan air atau alkali air. Unit pH diukur

dari skala 1 ke14. Julat yang sesuai untuk ternakan ikan patin adalah

6.5-8.0. Skala pH ditentukan seperti jadual dibawah.

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14

Asid Neutral Alkali

Kadar pH yang terlalu tinggi boleh membantut kadar tumbesaran dan
seterusnya menjurus kepada kematian ikan.pH air boleh diukur
menggunakan pH meter atau pH kit

62 | P a g e

Kaedah menguji pH air pH colour chart
pH test kit

Titiskan 3 titik pH Goncangkan Bandingkan pada pH
test solution Colour Card

6.3 Kaedah menguji pH menggunakan pH test kit

63 | P a g e

Ammonia adalah bahan kimia yang terhasil daripada proses
perkumuhan ikan. Bahan kimia ini akan dilepaskan kedalam air dan
menjadi toksik kepada ternakan dalam kuantiti yang tinggi. Selain dari
itu, ammonia juga boleh terhasil daripada sisa-sisa makanan yang
berlebihan dan hasil pereputan tumbuhan yang ada di dalam sistem
ternakan.

O2 O2 Nitrate
(NO )
Ammonia Nitrite
(NO ) 3
(NH NH )
3,, 4 2

Terdapat dua bentuk ammonia iaitu - "ionized" dan "un-ionized". Bentuk
ammonia yang paling toksik adalah ammonia didalam bentuk "un-
ionized" (NH3) tetapi ammonia didalam bentuk "ionized" (NH4+) tidak
mendatangkan kemudaratan kepada hidupan ikan. Jumlah keseluruhan
ammonia adalah (NH3) + (NH4+).Melalui proses semulajadi biologi,
ammonia dalam bentuk toksik boleh ditukarkan kepada bentuk nitrat

64 | P a g e

(NO3-) yang tidak toksik malah didalam sistem ternakan dalam kolam,
ianya merupakan salah satu dari bahan baja.

Proses biologi ini dilakukan oleh bakteria. Proses penguraian ammonia
ini dinamakan nitrifikasi dan dapat digambarkan seperti berikut:
NH3 ------nitrosomonas-----> NO2- ------nitrobacter------> NO3-
Antara bahan yang digunakan menguji parameter ammonia adalah
ammonia test kit.

Colour Comperator Cube
Ammonia Reagent 1 For Fresh Water

Nessler Reagent
Botol Sampel Air

Isi sampel air (10 ml)

65 | P a g e

Titiskan 2 titisan ammonia
reagent 1 ( Goncang )

Titiskan 8 titisan nessler
reagent ( Goncang )

Tuang ke dalam colour
comperator cube

66 | P a g e

Bandingkan warna yang hampir-
hampir sama

6.4 Kaedah menguji ammonia menggunakan Ammonia test kit

Kekeruhan merujuk kepada kandungan bahan terampai didalam air.
Partikel-partikel halus ini dapat dilihat dengan mata kasar.Secara
ringkasnya, semakin banyak kandungan bahan terampai maka semakin
keruh air tersebut.
Unit ukuran bagi kekeruhan adalah Natelson Turbidity Unit (NTU).
Kekeruhan yang tinggi akan menghalang kadar penembusan cahaya
kedalam air seterusnya menggangu proses fotosintesis. Kadar optima
bagi kekeruhan adalah 100-200 ntu. Pemeriksaan kekeruhan dilakukan
menggunakan alat dipanggil Sechi disc.

67 | P a g e

Cara penggunaan dengan menenggelamkan secara perlahan-lahan
kedalam air sehingga warna putih dan hitamnya tidak kelihatan. Bacaan
optimum sechi disc adalah 20-30 cm kedalam air

Cakera Sechi

Masukkan cakera sechi Ambil bacaan pada takat cakera
perlahan-lahan kedalam air sechi
sehingga cakera tidak kelihatan

6.5 Kaedah menguji kekeruhan menggunakan Cakera Secchi

68 | P a g e

KEDALAMAN AIR PERNYATAAN
(CM)
1 - 25 Air keruh disebabkan oleh plankton atau partikel sisa makanan
lebihan
25-50 Maksimum (plankton mencukupi)

50 Jernih (plankton sedikit)

Panduan Penggunaan Cakera Secchi

Saliniti adalah kandungan garam terlarut dalam air. Unit bagi saliniti
diukur dlm ppt (part per thousand). Toleransi terhadap saliniti adalah
berbeza mengikut spesis ikan. Sebagai contohnya, ikan siakap boleh
toleransi diperairan tawar dan masin yang bersaliniti 0-30 ppt. Bagi
ternakan ikan patin, saliniti tidak diperlukan kerana ikan patin hidup
didalam air tawar. Sungguhpun begitu, ikan patin boleh hidup diperairan
yang salinitinya sehingga 10 ppt. Alat pengukuran saliniti adalah
menggunakan refractometer.

69 | P a g e

Refractometer

Air Tawar Air Payau Air laut Brine Water
(Freshwater) (Brakishwater) (Salinewater) (sangat
masin)
0 ppt 5-18 ppt 30 ppt
>50 ppt

6.6 Julat kemasinan air

70 | P a g e

Titiskan sample air Ambil bacaan saliniti

6.6 Kaedah menguji saliniti menggunakan Refraktometer

Tujuan pemantauan:
1. Mengelakkan kerugian akibat perubahan mutuair
2. Mengekalkan kadar kepadatan dan makanan yang optima
3. Menentukan kaedah pengurusan pada masa depan

71 | P a g e

PROSEDUR KERJA BORANG /
DOKUMEN

Mula • Proses bermula

Sedia • Sediakan peralatan Buku rekod
kualiti air

• Periksa peralatan dan pastikan

Periksa berfungsi dengan baik

Ambil & • Ambil bacaan parameter air dan
Rekod direkod

Pulih • Ambil tindakan pemulihan
sekiranya perlu

Tamat • Tamat

72 | P a g e

Contoh borang jadual pemeriksaan kualiti air

Tarikh Spesis Tangki Suhu pH DO Ammonia Nitrit Nitrat Kekeruhan
(˚C) (mg/l) (mg/l) (mg/l) (mg/l) (cakera
sechi)

73 | P a g e

PANDUAN 7 : ASUHAN DAN TUMBESARAN IKAN
PATIN

Asuhan bagi ternakan ikan patin tidak serumit ikan-ikan ternakan lain.
Ini kerana ikan patin boleh hidup dipersekitaran air yang rendah mutu
air. Terdapat 3 aspek utama yang perlu dititikberatkan dalam rutin harian
iaitu kualiti air, makanan dan sistem ternakan.

Kualiti Air

Rutin ASUHAN Makanan
Harian IKAN

Sistem
Ternakan

Aspek kejayaan ternakan ikan bergantung kepada pemeriksaan kualiti
air setiap hari. Perubahan parameter air yang mendadak boleh
menyebabkan ikan stress seterusnya menyebabkan kematian. Langkah
pemeriksaan kualiti air boleh dirujuk dalam LANGKAH 6.

74 | P a g e

Pemberian makanan kepada ternakan perlu mengikut regim pemakanan
yang ditetapkan. Pemberian makanan yang berlebihan boleh
mengotorkan air ternakan yang boleh mendatangkan penyakit kepada
ikan. Cara pemberian makan yang baik boleh dirujuk dalam LANGKAH
4.

Pemantauan berkala kepada sistem ternakan adalah perlu bagi
memastikan sistem beroperasi dengan baik. Masalah yang sering
berlaku kepada penternak biasanya kegagalan sistem pengudaraan
berfungsi dan kebocoran sistem pempaipan.

Sistem pengudaraan tidak berfungsi dengan baik menyebabkan oksigen
terlarut tidak dapat diberikan kepada ikan. Kebocoran sistem pempaipan
menyebabkan paras air menjadi kurang dan boleh menyebabkan ikan
stress.

Penyediaan sistem ternakan serta tips amalan yang baik boleh dirujuk
dalam LANGKAH 2.

75 | P a g e

Setiap hari, penternak perlu melakukan rutin ini bagi memastikan semua
3 elemen asuhan ikan berada dalam keadaan optimum. Kegagalan
berbuat demikian mengakibatkan ternakan bermasalah dan boleh
mendatangkan kerugian kepada penternak. Rutin harian ini boleh
dibahagikan kepada waktu pagi dan waktu petang.

Carta alir rutin harian penternakan ikan patin (pagi)

Sifon Tambah/tukar Beri makan Periksa Kualiti
mendapan/kotoran air dan rekod air dan rekod

Carta alir rutin harian penternakan ikan patin (petang)

Beri makan Periksa Kualiti Pantau sistem
dan rekod air dan rekod ternakan

76 | P a g e

RUJUKAN

Ali, M. M., Asif, A. A., Shabuj, M. A. I., Vaumik, S., Zafar, M. A., & Sharif,
B. N. (2016). Status of polyculturepangasiushypophthalmus with
carps in Jhikargacha upazila of Jessore district,
Bangladesh. International Journal of Fisheries and Aquatic
Studies, 4(1), 423-430.

Ali, Z., HossainA. and Mazid A. (2005). Effect of mixed feeding
schedules with varying dietary protein levels on the growth of
sutchi catfish, Pangasius hypophthalmus (Sauvage) with silver
carp, Hypophthalmic hthysmolitrix (Valenciennes) in ponds.
Aquaculture Research, 36: 627-634

Azharul Islam Shabuj, Md., A.A. Asif., Faruq, O.,Rafiqul Bari, Md., &
Rahman, A. (2016). Brood Stock Management And Induced
Breeding Of Thai Pangus (Pangasius hypophthal mus) Practiced
In The Hatcheries Of Jessore Region, Bangladesh. International
Journal Of Business, Social and Scientific Research. 4: 235-246

Chheng, P., Bun Thang, T., Baran, E. & Sy Vann, L. (2005). Pangasius
Hypophthalmus Sauvage, 1878) Sutchi Catfish . Biological
Reviews of Important Cambodian Fish Species, Based On
Fishbase Volume 1: Channa striata, Channa micropeltes;
Barbonymus altus;Barbonymus gonionotus; Cyclocheilichthys
apogon; Cyclocheilichthysenoplos; Henicorhynchus lineatus;
Henicorhynchus siamensis; Pangasius hypophthalmus; Pangasius
djambal. 103-107. Penang, Malaysia and Phnom Penh, Cambodia.
World Fish Centre.

Chheng, P., E. Baran, and Touch, B. T. (2004). Synthesis of all
Published Information on Sutchi Catfish Pangasius
hypophthalmus (treypra) Based on FishBase 2004. Worldfish
Center and Inland Fisheries Research and Development Institute,
Cambodia, Phnom Penh, 17.

FAO. (2006). Main producer countries of Pangasius hypophthalmus

[Online image]. Retrieved from

www.fao.org/figis/pdf/fishery/culturedspecies/Pangasius_hypophtal

mus/en?title..

77 | P a g e

Farid Uz Zaman, Md., Abdus Samad, Md., Ariful Islam, Md., Hasan-Uj-
Jaman, Md., Khondoker, S. & A.A. Asif. (2017). Assessment of
sustainability of Pangasius (Pangasius hypophthalmus) farming at
Jhikargachha upazila in Jessore district, Bangladesh. International
Journal of Fauna and Biological Studies. 4(5): 109-119

Roberts, T.R. & Vidthayanon, C. (1991). Systematic revision of the Asian
catfish family Pangasiidae, with biological observations and
descriptions of three new species. Proceedings of the Academy
of Natural Sciences of Philadelphia 143: 97–144.

Potaros, M. & Sitasit, P., (1976). Induced spawning of Pangasius sutchi
(Fowler). FAO, IPFC/76/SYM/36, 17, pp. 349–353.

Hardjamulia A.. Djajadiredja R., Atmawinata S. & ldris D. (1981).
Pembenihan jambal siam (Pangasius sutchi) dengan suntikan
ekstraks kelenjar hipofise ikan mas (Cyprinus curpio). Bull. Pen.
Perikanan Darat, 1: 183-190.

Hill, M.T. and S.A. Hill. (1994). Fisheries ecology and hydropower in the
lower Mekong River: an evaluation of run-of-the-river projects.
Mekong Secretariat, Bangkok,Thailand. 106 p

INCO-DC. (2000). Catfish Asia Project: final report of CTU, Can Tho
University, College of Agriculture, July 2000. p. 77-93.In INCO-DC
Characterization, utilization and maintenance of biological diversity
for the diversification and sustainability of catfish culture in South-
East Asia: Final Report.

Kheng, Chhuon Kim Chhea, S. Viravong, K. Bouakhamvongsa, U.
Suntornratana, N. Yoorong, Nguyen Thanh Tung, Tran Quoc Bao,
A.F. Poulsen & J. Valbo Jørgensen. (1999). Fish migrations and
spawning habits in the Mekong mainstream: a survey using local
knowledge (basin-wide). Assessment of Mekong fisheries: Fish
Migrations and Spawning and the Impact of Water Management
Project (AMFC). AMFP Report 2/99. Vientiane, Lao, P.D.R.

Lim, P., S. Lek, S.T. Touch, S.-O. Mao & B. Chhouk. (1999). River
(Cambodia, Southeast Asia). Aquatic Living Resources 12(6):379-
386

78 | P a g e

Legendre, M., Slembrouck, J., Subagja, J. & Kristanto, A.H. (2000).
Ovulation rate, latency period and ova viability after GnRH- or
hCG-induced breeding in the Asian catfish Pangasius
hypophthalmus (Siluriformes, Pangasiidae). Aquatic Living
Resources. 13: 145−151.

Phuong, N. T., & Oanh, D. T. H. (2010). Striped catfish aquaculture in
Vietnam: a decade of unprecedented development. In Success
stories in Asian aquaculture (pp. 131-147). Springer, Dordrecht.

Rohul, A.K.M.,Bapary, M.A.J.,Islam, M. A., Shahjahan, M. & Hossain,
M.A.R. (2005). The impacts of compensatory growth on food
intake, growth rate and efficiency of feed utilization in thai pangas
(Pangasius hypophthalmus). Pakistan Journal of Biological
Sciences, (8): 766-770.

Rainboth, W.J. (1996). Fishes of the Cambodian Mekong. FAO Species
Identification Field Guide for Fishery Purposes. FAO, Rome, 265
p.

Roberts, T.R. (1993). Artisanal fisheries and fish ecology below the great
waterfalls of the Mekong River in southern Laos. Natural History
Bulletin of the Siam Society, 41:31-62.

Subagja, J., Slembrouck, J., Thanh Hung, L. & Legendre, M. (1999).
Larval rearing of an Asian catfish Pangasius hypophthalmus
(Siluroidei, Pangasiidae): Analysis of precocious mortality and
proposition of appropriate treatments. Aquatic Living Resources 12
(I): 37-44

79 | P a g e