AMALI PART 1

TAJUK Mengkaji dan menentukan kepekatan larutan sukrosa yang isotonik terhadap sap sel silinder ubi kentang
PERNYATAAN Apakah kepekatan larutan sukrosa yang isotonikdengan sap sel ubi kentang ?
MASALAH
HIPOTESIS Larutan sukrosa yang isotonik dengan sap sel ubi kentang tidak menunjukkan sebarang perubahan pada
BAHAN DAN panjang / jisim silinder ubi kentang
RADAS Ubi kentang, air suling, larutan sukrosa 0.1M, 0.2M, 0.3M, 0.4M, 0.5M dan 0.6M, kertas turas,penebuk
PEMBOLEHUBAH gabus, piring petri, jam randik, pembaris.
PROSEDUR
1. Pembolehubah Dimanipulasi: Kepekatan larutan sukrosa
LANGKAH 2. Pembolehuba bergerakbalas:Perubahan panjang silinder ubi kentang
BERJAGA-JAGA 3. Pembolehubah Dimalarkan: Jenis ubi kentang // isipadu larutan // masa rendaman // panjang
PEMERHATIAN
asal silinder ubi kentang
1. Sediakan tujuh piring petri dan labelkan dengan P, Q, R, S, T dan U.
2. Setiap piring petri diisikan dengan larutan seperti berikut:

Piring petri P - 10 ml air suling,
Piring petri Q - 10ml larutan sukrosa 0.1 M,
Piring petri R - 10ml larutan sukrosa 0.2M,
Piring petri S - 10 ml larutan sukrosa 0.3M,
Piring petri T - 10 ml larutan sukrosa 0.4M
Piring petri U - 10 ml larutan sukrosa 0.5M
Piring petri V –10 ml larutan sukrosa 0.6M

3. gunakan penebuk gabus untuk mendapatkan 7 silinder ubi kentang
4. Potong silinder-silinder ubi kentang sepanjang 5.0cm
5. Lap silinder-silinder ubi kentang dengan kertas turas dan timbang jisim setiap silinder

dengan menggunakan neraca dan rekodkan jisimnya
6. Rendam satu silinder ubi kentang di dalam setiap piring petri yang berlabel P, Q, R, S,

T, dan U selama 30 minit.
7. Selepas 30 minit, keluarkan silinder ubi kentang dari piring petri dan lapkan dengan

menggunakan kertas turas.
8. Ukur panjang / jisim akhir silinder ubi kentang r dengan pembaris / neraca
9. Perhatikan perubahan dalam keadaan/tekstur pada silinder-silinder ubi kentang tersebut.
10. Rekodkan semua keputusan di dalam jadual
11.Plotkan graf kepekatan larutan sukrosa melawan perubahan panjang / jisim silinder ubi

kentang.
1. Pastikan panjang silinder ubi kentang adalah sama di awal eksperimen
2. Silinder ubi kentang mesti dilap sebelum panjang/jisimnya direkodkan di akhir eksperimen

Piring Kepekatan Panjang/Jisim silinder Perubahan Peratus Tekstur
petri larutan dalam perubahan dan
ubi kentang panjang/ panjang/
P sukrosa(M) Jisim(cm) Jisim(%) keadaan
Q Panjang Panjang/
R 0
S 0.1 /Jisim Jisim
T 0.2
U 0.3 awal(cm) akhir(cm)
V 0.4
0.5
0.6

TAJUK Mengkaji pergerakan bahan merentasi membran separa telap
PERNYATAAN Apakah faktor yang mempengaruhi pergerakan bahan merentasi membran separa telap?
MASALAH
HIPOTESIS Pergerakan bahan merentasi membran separa telap adalah berdasarkan saiz bahan.
BAHAN DAN Molekul yang kecil boleh merentasi membrane separa telap manakala molekul yang besar tidak dapat
RADAS merentasi membran separa telap.
PEMBOLEHUBAH Larutan Benedict, Larutan glukosa 30%, Ampaian kanji 1%, larutan iodin, tiub visking, benang, bikar,
PROSEDUR tabung uji, penunu Bunsen, tunku kaki tiga, kasa dawai, pemegang tabung uji, silinder penyukat

LANGKAH 1. Pembolehubah Dimanipulasi: saiz molekul zat terlarut
BERJAGA-JAGA 2. Pembolehuba bergerakbalas: berubahan warna larutan di dalam bikar dan tiub visking
PEMERHATIAN 3. Pembolehubah Dimalarkan: tempoh rendaman
1. Potong tiub visking sepanjang 15cm dan rendam di dalam air selama 5 minit untuk

melembutkannya
2. Buka dan ikat salah satu hujung tiub visking menggunkan benang dengan ketat supaya tidak

bocor.
3. Maukkan 5 ml larutan glukosa dan 5ml ampaian kanji ke dalam tiub visking dan ikat satu lagi

hujung dengan ketat menggunakan benang.
4. Rekodkan warna larutan dalam tiub visking.
5. Masukkan 400ml air suling dan 15ml larutan iodin ke dalam bikar .
6. Rekodkan warna larutan di dalam bikar .
7. Bilas bahagian luar Tiub visking yang mengandungi ampaian kanji dan larutan glukosa dengan

air suling dan rendam di dalam bikar berisi air dan larutan iodin selama 40 minit.
8. Selepas 40 minit keluarkan tiub visking dan dipindahkan ke dalam bikar yang kering.
9. Rekodkan warna larutan di dalam tiub visking dan bikar
10. Jalankan Ujian Benedict ke atas larutan di dalam tiub visking dan larutan di dalam bikar.

Ujian Benedict:

2ml larutan dari tiub visking dan 2ml larutan dari bikar dimasukkan ke dalam 2 tabung uji yang
berasingan dan dipanaskan di dalam kukus air selama kira-kira 5 minit

11. Rekodkan keputusan ujian Benedict di dalam jadual.

Pastikan kandungan di dalam tiub visking tidak bercampur/tertumpah ke dalam bikar dengan
mengikatnya dengan ketat dan membilas bahagian luar tiub visking sebelum memasukkannya ke dalam
bikar.

Kandungan Warna asal Warna akhir Keputusan ujian
Benedict

Tiub visking 5 ml lartuan glukosa dan
Bikar 5ml ampaian kanji
400ml air suling dan 15ml
larutan iodin

TAJUK Mengkaji osomosis menggunakan osmometer
PERNYATAAN Apakah bahan-bahan yang dapat bergerak merentas membran separa telap?
MASALAH
HIPOTESIS Molekul air dapat bergerak merentas membrane separa telap.
BAHAN DAN Larutan sukrosa 30%, tiub visking, benang, air suling, bikar 250 ml, kaki retort lengkap dengan
RADAS pengapit, tiub kapilari, pembaris meter, pen penanda, jam randik, gunting, picagari
PEMBOLEHUBAH
1. Pembolehubah Dimanipulasi: masa
2. Pembolehuba bergerakbalas: kenaikan aras larutan sukrosa di dalam tiub kapilari
3. Pembolehubah Dimalarkan: kepekatan larutan sukrosa

PROSEDUR 1. Potong tiub visking sepanjang 8cm dan rendam di dalam air selama 5 minit untuk
melembutkannya.
LANGKAH
BERJAGA-JAGA 2. Selepas 5 minit keluarkan tiub visking dari air dan salah satu hujung tiub visking diikat dengan
PEMERHATIAN benang dengan ketat supaya tidak bocor.

3. Buka satu lagi hujung tiub visking dan masukkan 15ml larutan sukrosa dengan menggunakan
picagari

4. Bilas permukaan luar tiub visking.
5. Isikan sebuah bikar 500 dengan 400ml air suling.
6. Ikatkan tiub visking yang berisi larutan sukrosa pada satu hujung tiub kapilari dengan ketat

dan apitkan tiub kapilari secara menegak pada kaki retort dengan memastikan tiub visking
terendam di dalam bikar yang berisi air suling.
7. Tandakan aras awal larutan sukrosa pada tiub kapilari.
8. Tandakan aras larutan sukrosa pada tiub kapilari setiap 10 minit selama 40 minit.
9. Rekodkan semua keputusan di dalam jadual.
10. Lukiskan graf menunjukkan perubhan aras sukrosa mengikut masa.
Pastikan ikatan pada tiub visking adalah ketat untuk mengelakkan larutan sukrosa dari keluar ke dalam
air suling.

Masa(minit) 0 10 20 30 40
Kenaikan
aras sukrosa

Tiub kapilari
Aras awal larutan sukrosa

Larutan sukrosa
Air suling

TAJUK Kesan suhu terhadap tindakbalas enzim amilase air liur
PERNYATAAN Apakah kesan suhu terhadap kadar tindakbalas enzim amilase air liur?
MASALAH
HIPOTESIS Semakin tinggi suhu semakin tinggi kadar tindakbalas enzim amilase sehingga
BAHAN DAN mencapai suhu optimum/ Aktiviti enzim amilase air liur adalah paling tinggi pada suhu 37ºC
RADAS Bikar, tabung uji, termometer, picagari, penitis, rod kaca, jam randik, Jubin berlekuk, kukus air, 1%
PEMBOLEHUBAH ampaian kanji, air liur, larutan iodine, ais kiub, dan air suling, penunu Bunsen, tunku kaki tiga, kasa
PROSEDUR dawai, rak tabung uji
1. Pembolehubah Dimanipulasi: Suhu
LANGKAH 2. Pembolehubah Bergerakbalas: Kadar tindakbalas enzim
BERJAGA-JAGA 3. Pembolehubah Dimalarkan: Isipadu ampaian kanji / kepekatan ampaian kanji / pH /
PEMERHATIAN
Isipadu amilase / kepekatan amilase
1. Untuk memperoleh larutan air liur (amilase liur):-

a. Kumur mulut dengan air suam dan kumpulkan air liur sebanyak 5 ml.
b. Tambahkan 5 ml air suling dan kacau.
2. 5 ml 1% ampaian kanji dimasukkan ke dalam tabung uji berlabel A1, B1, C1,D1 dan E1
masing-masing dengan menggunakan picagari.
3. 2 ml larutan air liur dimasukkan ke dalam tabung uji berlabel A2, B2, C2, D2 dan E2
menggunakan picagari.
4. Tabung uji A1 dan A2, B1 dan B2, C1 dan C2, D1 dan D2, E1 dan E2 masing-masing
direndam dalam kukus air pada suhu 0ºC, 28ºC, 37ºC, 45ºC dan 60ºC.
5. Tabung uji ini dibiarkan selama 5 minit.
6. Sementara itu, titiskan 2 titis larutan iodin pada setiap lekuk pada jubin putih berlekuk.
7. Selepas 5 minit rendaman, ampaian kanji dalam tabung uji A1 dituangkan ke dalam
tabung uji A2 yang mengandungi larutan air liur. Campuran ini dikacau dengan
menggunakan rod kaca. Jam randik dihidupkan serta merta.
8. Dengan menggunakan penitis, setitis campuran daripada A2 diletakkan pada larutan
iodine di lekuk yang pertama pada jubin putih. Lekuk pertama dianggap 0 minit.
9. Ujian iodin diulang setiap 10 minit. Penitis mesti dicuci setiap kali mengambil sampel.
Masa yang diambil untuk hidrolisis kanji menjadi lengkap (selepas larutan iodin tidak
berubah menjadi biru tua apabila ditambah larutan kanji) direkodkan.
10.Langkah 7 hingga 9 diulang bagi tabung uji B1, C1, D1 dan E1.
11. Termometer digunakan untuk memastikan suhu kekal mengikut kehendak eksperimen.
12.Keputusan direkodkan dan graf suhu melawan kadar tindakbalas enzim diplotkan.

1. Bilas penitis setiap kali selepas digunakan

Tabung uji Suhu (ºC) Masa yang diambil Kadar tindakbalas
untuk kanji (min-1)
A1 0 dihidrolisis dengan
B1 28 lengkap(minit)
C1 37
D1 45
E1 60

TAJUK Kesan pH terhadap tindakbalas enzim pepsin
PERNYATAAN Apakah kesan pH terhadap kadar tindakbalas pepsin?
MASALAH
HIPOTESIS Tindak balas pepsin adalah maksimum pada medium berasid(pH1.5-2.5)
BAHAN DAN Ampaian albumen, larutan pepsin 1%,, asid hidroklorik 0.1M, larutan natrium hidroksida 0.1M, kukus
RADAS air bersuhu 37ºC, kertas pH, air suling dan penapis, bikar,penitis, thermometer, tabung uji, picagari
PEMBOLEHUBAH 5ml(tanpa jarum), kasa dawai, penunu Bunsen, tunku kaki tiga, jam randik dan rak tabung uji
1. Pembolehubah Dimanipulasi: pH medium
PROSEDUR 2. Pembolehubah Bergerakbalas: Kadar tindakbalas enzim
3. Pembolehubah Dimalarkan: Suhu, Isipadu dan kepekatan larutan pepsin(enzim) / Isipadu
LANGKAH
BERJAGA-JAGA dan kepekatan ampaian albumen(substrat)
PEMERHATIAN 1. Sediakan satu ampaian albumen dengan mengacau putih telur daripada sebiji telur dengan
500ml air suling. Didihkan ampaian tersebut dan dibiarkan sejuk. Buang butiran yang besar
dengan menggunakan penapis.
2. Sediakan tiga tabung uji dan labelkan sebagai P, Q, dan R.
3. Masukkan 5ml ampaian albumen ke dalam setiap tabung uji menggunakan picagari.
4. Masukkan larutan berikut ke dalam tabung uji tersebut seperti berikut:
P : 1ml asid hidroklorik 0.1M + 1ml larutan pepsin 1%
P : 1ml air suling + 1ml larutan pepsin 1%
P : 1ml larutan natrium hidroksida 0.1M +1ml larutan pepsin 1%
5. Celupkan sehelai kertas pH ke dalam setiap tabung uji danrekodkan pH campuran
6. Masukkan semua tabung uji ke dalam kukus air yang suhunya ditetapkan pada 37ºC selama 20
minit
7. Perhatikan keadaan campuran
8. Biarkan campuran-campuran tersebut selama 20 minit dan perhatikan keadaan campuran.
9. Keputusan direkodkan dalam jadual berikut.
1. Pastikan suhu kukus air sentiasa berada pada 37ºC

Tabung uji pH Campuran

P Pada permulaan Selepas 20 minit
Q
R eksperimen